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蹄葉炎の治療を考える際、予防、支持療法、治療の選択肢はいくつかありま すが、抗生物質のボトルに手を伸ばす必要はありません。病気の連鎖の弱点を特定することで、子牛の疥癬を完全に防ぐことができます。

予防は、子牛の疥癬を管理する上で最も重要なステップです。 子牛が健康を保てるか、疥癬にかかるかは、子牛の感染に対する抵抗力と、子牛がさらされる感染レベルのバランスによって決まります。

- 出生後数時間は初乳を十分に与える。

- 生後 2 時間以内に、子牛体重の 10% が 24Brix を超える初乳を摂取すること。

- 生後 6～8 時間で、子牛体重の 5% が 24Brix を超える初乳。

- 優れた受動的移行を達成するためには、子牛は生後8時間以内に300グラムのIgGを摂取しなければならない。

- ストレスを軽減するために、適切な住居や天候を遮る隠れ家を提供する。

- 子牛の飼育計画を慎重に立て、過密状態にならないようにする。

- 生まれたばかりの子牛と生後3～4日以上の子牛を混ぜることは避けてください。

- 日常的な管理作業（例えば、除毛、去勢、ワクチン接種など）に伴うストレスを最小限に抑える。

- 給餌用具や設備を洗浄・滅菌し、衛生管理を徹底する。

- 飼料や水桶の周りに糞便汚染が蓄積しないようにする。飼料置き場や水桶は地面から離しておく。

- 個別またはグループの子牛のペン/小屋は、牛と牛の間を清掃し、消毒しなければなりません。

- 定期的に敷料を掃除するか、敷料の上にたっぷりとドレッシングをかける。寝床が十分に乾いていれば、膝が濡れることはありません。

- できるだけ少ない人数で、日常的な授乳プログラムを開発する。

- 排膿の症状には迅速に対応し、病気の子牛を隔離して原因に対処する。

- 乾乳牛に適切な排膿ワクチンプログラムを実施する。ワクチンを接種した牛は、ロタウイル ス、コロナウイルス、クリプトスポリジウム、大腸菌に対する抗体を多く産生し、初乳に 含ませることができます。分娩前に洗菌ワクチンを接種した牛の子牛を購入する。

洗膿の一般的治療

牛の疥癬には、原因となる病原体によって特定の治療法がありますが、子牛の回復を確実にするために、全てのケースで以下のステップを踏む必要があります：

1.隔離

- 搾乳中の子牛は、清潔で乾燥した暖かいペンに隔離する必要があります。

2.水分補給療法

- 子牛は一度排膿すると、急速に脱水、酸欠状態になり、ナトリウム（Na）、 カリウム（K）、塩化物（Cl）などの必須電解質が低下します。子牛は毎日、体重の 5% から 10% の水分を失う可能性があります。治療には、水分補給、アシドーシスの是正、電解質の補充が必要である。市販されている電解質製剤の中には、水分補給と電解質の補給を助ける一方で、アシドーシスを効果的に是正できないものも多い。子牛の回復には、アシドーシスの是正が不可欠です。

- 子牛には、糞便から失われる電解質を補うために、十分な水分と電解質を与えなければならない。

- 電解質やミルクを少量ずつ頻繁に与える方が、大量に与えるよりも良い。

- 健康な子牛は1日に最大4リットルの水分を必要とし、泌乳期の子牛は失われた水分を補うためにさらに4リットルの水分を必要とします。

- 電解質スカウア処理は、強イオン濃度差（SID）が 60mmol でなければならない。

- 必要な電解質の量は、子牛の症状の程度によります。電解質を過剰に与えても、子牛に悪影響はほとんどありません。しかし、電解質の給与量が少ないと、排膿が長引 き、脱水や電解質の減少を改善することができません。

3.ミルクフィーディング

- ミルクまたは良質の代用乳を与え続けることで、洗礼を長引かせたり悪化させたりすることはなく、腸の治癒に役立ちます。

- 搾乳中の子牛が飲みたがる限り、通常量のミルクまたは代用乳を与え続ける。

- ミルクを再開する場合は、完全な濃度で提供する。ミルクを電解質溶液で薄めてはいけません。

- 電解質は、ミルクを与える少なくとも30分前に与えるべきである。

- 牛乳や代用乳は胃ろうにしてはならない。

4.コロストラム

- 初乳を与えることは、様々な牛の排膿病原菌に対する効果的な治療法である。

- 治療薬として初乳を給与することで、削蹄日数と重症度が大幅に減少した。また、1 日平均増体量も有意に増加した。 抗生物質で治療された子牛の上に

- コロストラムを治療薬として使う

- 140～150gの初乳を1リットルの水に混ぜて、別に与える。

- 初乳を1日1回、5日間、または下痢が治まるまで与える。

- 140～150グラムの初乳と電解質を2リットルに混ぜることも、治療と水分補給に非常に効果的である。

注：すべての電解質が同じように作られているわけではなく、電解質とコロストラムの組み合わせが推奨されない場合もあることを覚えておくことが重要です。獣医師にご相談の上、最適な組み合わせをお選びください。

5.抗生物質

- 抗生物質は、子牛の疥癬の最も一般的な原因である寄生虫やウイルスには効きません。

- 抗生物質を投与するのみである：

1.獣医師と相談の上

2.注射による

3.子牛の体温が 102.5°F以上である。

要約すると、子牛の疾病を防ぐには予防が重要です。万が一発病した場合、支持療法や初乳給与などの代替療法を行うことで、子牛は回復し、再び成長することができます。

 

トラビス・ホワイトDVM博士

SCCL獣医技術サービス部長
[email protected]

参考文献

離乳前の子牛の下痢治療としての初乳給与

1.Urie, N. J.; Lombard, J. E.; Shivley, C. B.; Kopral, C. A.; Adams, A. E.; Earleywine, T. J.; Olson, J. D.; Garry, F. B. 米国酪農場における離乳前の未経産牛管理：離乳前の未経産子牛の罹病率と死亡率に関連する要因。J. Dairy Sci. 2018, 101 (10), 9229-9244. https://doi.org/10.3168/jds.2017-14019.

2.Oultram, J., E. Phipps, A.G.V. Teixeira, C. Foditsch, M.L. Bicalho, V.S. Machado, R.C. Bicalho, and G. Oikonomou.2015.抗生物質（オキシテトラサイクリン、フロフェニコールまたはツラスロマイシン）が新生仔牛の糞便微生物多様性に及ぼす影響。Vet.doi:10.1136/vr.103320.

夏ほど良い季節はありませんが、暑さによるストレスは妊娠牛やその子牛に負担をかけます。その影響は離乳前まで続くため、牛群の将来を担う牛に暑さによるストレスを与えないように注意する必要があります。

夏の間は高温多湿で、泌乳牛の飼料摂取量が減り、涼しい季節ほど乳量が出なくなることに気づきます。同様に、妊娠後期に牛が暑熱ストレスにさらされると、分娩前に乳腺の発育が悪くなり、分娩後に乳量が減少します。暑熱ストレス中に牛に何が起こっているかという生理学的なことはよく理解されてい ますが、それが生まれてくる子牛や初乳の質にどのような影響を与えるかとい う具体的な証拠はあまりありません。

分娩前期の暑熱ストレスが子牛の成長に及ぼす影響については、研究者の間 でよく合意されており、暑熱ストレス環境または冷房環境にさらした牛から 生まれた子牛を調査した場合、同様の結果が得られています。手始めに、 ヒートストレス牛から生まれた子牛は、冷えた牛から生まれた子牛に比べて出生時の体重が少ない。 1970 年代に行われた研究によると、子宮への血流が減少し、胎盤重量も減少するため、胎児に届く栄養分が少なくなり、出生時の子牛の体重が軽くなることがわかっています。さらに、暑熱ストレスは妊娠期間を短くすることが多く、子牛の出生時体重にも影響します。こうした体重の差は、離乳前や離乳期にも引き継がれる可能性がある。例えば、2017年に実施された研究では、以下のことが実証された。 冷却した子牛は、暑熱ストレスを与えた子牛と比較して、1日当たり0.2kg体重が増加し、離乳時の体重は4kg増加した。

成長に影響を与えるだけでなく 熱ストレスのかかった牛から生まれた子牛は、冷えた子牛に比べてIgGの吸収効率も低い。 過去 10 年間に行われた複数の研究により、冷えた子牛と比較して、熱ストレス を受けた子牛は血中 IgG 濃度が低く、IgG の見かけの吸収効率（AEA）が 低いことが証明されています。IgG の見かけの吸収効率は、基本的に子牛が初乳からどれだけの IgG を 吸収したかをパーセンテージで示したものです。例えば、フロリダ大学で行われた研究では、熱ストレスを受けた子牛は初乳から 利用可能な IgG のうち 12% しか吸収できなかったのに対し、冷えた子牛は 20% を吸収できたと報告されています。この研究だけでなく、他の多くの研究でも、子牛には熱ストレスを受けたダ ムから初乳を与えています。

このことから、研究者たちは2つの質問を立てた：

1.IgG 吸収率の違いは、ヒートストレス牛の質の悪い初乳をヒートストレス子牛に 与えたことに起因するのか？

2.ヒートストレスを受けた子牛の IgG 吸収効率が低下するのは、妊娠中のヒートストレスが子牛自体に影響するためか？

第 1 の説に関しては、熱ストレスを受けた牛の初乳の品質が低下するかどう かに関する報告は、相反するものです。多くの研究で 熱ストレスを受けた牛は、冷えた牛に比べて初乳の質（IgG/L 量）と量（初乳の総生産量）が低い。 この研究を裏付けるように、SCCL（SCCL、カナダ、サスカトゥーン）の研 究所では、過去 20 年間に年間 10 万以上の初乳サンプルを検査し、初乳中の IgG が夏場は他の季節に比べて最大 20% 減少することが証明されています。しかし、一部の研究では、暑熱ストレスを受けた牛の初乳と冷涼な牛の初乳 に差がないと報告している。このような研究の多くは、暑熱ストレスを受けた牛の初乳をプールし たり、少頭数の初乳しか検査しなかったり、初乳量を記録していなかったりする。しかし、初乳の品質に影響を与える要因は分娩時期以外にも多くあるため、時期 に関係なく、受動免疫を確実にするために、子牛に初乳を与える前に初乳の品質を 検査することをお勧めします。

ヒートストレス牛の初乳の質に関する研究は相反するものですが、2014 年に行われた研究では、ヒートストレス子牛の受動免疫の低下が初乳効果によるものなのか、それとも前述の 2 番目の説、すなわち子牛効果によるものなのかを明らかにしようとしました。この研究では、両グループの子牛に温度差のない環境で飼育された牛から採取した同じ初乳を与えた場合でも、暑熱ストレスを受けた子牛は冷えた子牛に比べて生後1日目のIgGの血中濃度が低いことが示された。さらに、体温が中性 のダムから生まれた子牛に、暑熱ストレスのある牛または低温の牛の初乳を与えても、血中 IgG 濃度に差は見られなかった。このことから 初乳の産地に関わらず、妊娠後期の熱ストレスは、子牛が生まれた時に IgG を吸収する能力に何らかの形で悪影響を及ぼします。

では、なぜヒートストレス状態の子牛は IgG の吸収効率が低いのでしょうか？前述したように、ヒートストレス牛から生まれた子牛は出生時に体重が軽いため、IgG を吸収する小腸の表面積が小さくなると考えられます。基本的に、いくらIgGを与えても、小柄な子牛は小腸の表面積が少ないため、血中に吸収されにくいのです。研究者らは、妊娠後期の暑熱ストレスが小腸の発育を阻害し、IgGを 吸収する表面積が小さくなるか、IgGを吸収できる腸管細胞の数が減少す るという仮説も立てています。

まとめると、ヒートストレス牛から生まれた子牛は、冷涼な牛から生まれた 子牛と比較して、出生体重が低く、離乳前の時期の成長が低下し、初乳から IgG を吸収する能力が低下します。暑熱ストレス牛の初乳の質に関する研究は様々ですが、子牛が寒い季節に 生まれた牛と同じように健康で生産的になる可能性を高めるためには、夏の季節 に生まれた子牛に可能な限り質の良い初乳を与えることが重要です。

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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子牛期の下痢は、幼若牛や乳牛が罹患する最も一般的な健康問題です。子牛は特に生後 2 週目に影響を受けやすい。生後 6 週間の子牛の死亡のうち、最大 40% が洗 濯に関連しています。治療法の適用を開始する前に、どのようにそれを特定するかを知ることが重要です。

1.子牛の洗礼の原因:

排膿は栄養性排膿と感染性排膿の2種類に分類される。栄養性排膿は通常、管理ルーチンの破綻によるストレスが原因で起こる。栄養性牛体傷害が進行して感染性牛体傷害になることも多く、これは病原体が大量に存在することが原因です。複数の感染因子が子牛の疥癬の原因となることがあり、複数の感染因子が関与していることもよくあります：

2.洗菌の症状

子牛の糞便の回数と量が増え、水分含量が通常より高くなることで、子牛の疥癬は簡単に発見できます。原因が何であれ、酪農家には以下のような症状が見られます：

- 明るい黄色または白色の糞便。

- 哺乳を嫌がる子牛の抑うつ状態。

- 目がくぼんでいる子牛、および/または体温がある子牛。

- 皮膚を持ち上げると、皮膚は膨らんだり、へこんだりする。

- 体重減少と衰弱。

- 重症の場合、子牛は倒れて昏睡状態になり、死亡する。

注意深く観察することで、子牛の飼育担当者は、以下の兆候に注意することで、洗腔が発生する前日に洗腔の発生を予測することが可能です：

- マズルが乾燥し、鼻孔から濃い粘液が出る。

- とても固いうんこ。

- ミルクの拒否。

- 横になる傾向がある。

- 体温が高い（102.5°F以上）。

下痢の子牛の水分補給状態の推定

 

 

トラビス・ホワイトDVM博士

SCCL獣医技術サービス部長
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多くの酪農場が、既にある初乳を使いたいと考えているが、初乳が完璧でないことが多い。初乳を与える新しい方法によって、生産者は子牛に与える前に母牛の初乳の質を高めることができる。

初乳は子牛の生存と成績に不可欠であり、生涯の生産性に影響を与えることが広く知られるようになった。

初乳の管理は通常、4つの主要なポイントに重点を置いて初乳の管理とプロトコールの実施を行う：

1.投与のタイミング（最初の2時間以内と12時間以内の2回目の授乳）

2.初乳の質（IgG抗体の濃度が50g/L以上）

3.初乳の清浄度（低病原体負荷または低細菌数）

4.初乳の量（通常、体重の 10% （kg））。

これらの管理面は全て等しく重要です。例えば、4 つのうち 3 つはうまく管理できていても、子牛の健康状態が悪けれ ば、酪農家は淘汰されます。例えば、初乳の時期、初乳の清浄度、初乳の量が全て良好に管理されてい るにも関わらず、初乳の抗体量が不足しているとします。子牛が初乳の抗体を十分に得られなかったり、全く得られなかったりすると、生後 60 日間で排膿、呼吸器疾患、全死亡のリスクが 4 倍以上に増加します。これはある意味、子牛の牝牛が初乳を介して子牛に免疫力を伝えているためで、受動的移行と呼ばれる現象もこのためです。今回は、初乳の質または抗体・IgGの濃度に注目しましょう。適切な抗体レベルについて説明しますが、重要なことは以下の通りです。 初乳は単なる抗体ではありません。初乳には、何百もの生物活性因子、天然のプレバイオティクス、栄養素、ビタミン、微量ミネラルが詰まっています。

初乳中の抗体またはIgG濃度はどのように測定するのですか？

大腸抗体/IgG 濃度を測定する最も標準的な方法は、ラジアル免疫拡散法と呼ばれる高度に技術的な実験室での方法ですが、農場での間接的な測定方法としては、光学式またはデジタル式のブリックス屈折計があります。繰り返しますが、これらの装置は真のコロストラルIgG含量を「間接的」に測定するもので、その精度は実に約80%です。ブリックスレベル 22% の初乳は、1L あたり約 50g の IgG を含有していることになります。ホルスタインの子牛の場合、体重の 10%（.1 X 40 = 4L）、ブリックス 22%（50g IgG/L x 4 = 200g IgG）の初乳を与えるというのが、長年の経験則となっています。しかし、新しい推奨事項では、子牛の罹病率や受動免疫の移行失敗率 （FTPI）は、初生仔牛の抗体/IgG を多く与えることで減少するとしています。実際、この新勧告では、優れた受動免疫移行を達成するために、 300g の IgG を与えることを目標としています。では、ブリックスの観点からはどうなのでしょうか？ つまり、ブリックス値が24%ブリックス以上の初乳を選別するために、農場での基準を引き上げる必要があるということです。

初乳を給与するごとにブリックスを測定すべきか、それとも個々の牛の初乳を搾乳するごと に測定すべきか？

答えはイエス。なぜなら、初乳の抗体濃度は非常にばらつきがあるからです。実際、牛によって遺伝的な違いがあり、乾乳牛の栄養状態、季節性、分娩数、初乳を採取した時期など、様々な要因が初乳のばらつきの原因となっています。長年の研究により、30%以上の初乳の抗体が50g/L以下であることが示されています（これは、22%ブリックス＝50g/L IgGという古い基準に基づいていることを忘れないでください）。2014年にNational Health Monitoring Studyが行った最近の調査では、約23%の初乳のブリックスが22%以下であることが示されました。新基準では、初乳のブリックスレベルが24%を超えるものを給与するように示されているため、この点を考慮する必要がある。これは、初乳がブリックス 22% 未満では価値がないということでもあるのでしょうか？24 %ブリックス以下の初乳を使用するにはどうしたらいいでしょうか？まず第一に ブリックスレベルが15-16%以下の初乳は廃棄すること。 Brix がこのレベルであれば、初乳に含まれる IgG が 1 リットル当たり 30g 未満であり、子牛に十分な免疫力を与えていないことを示しています。

では、初乳のブリックス検査が15～24%ブリックスだったらどうでしょう？

ひとつの解決策は、この初乳を生後6～12時間の間に2回目の授乳に使うことである。しかし、「エンリッチメント」と呼ばれる新たなアプリケーションを使えば、効果的な授乳が可能である。

解決策はある！....エンリッチメント！...：

エンリッチメントでは、正確な量のコロストラムレプリケーサーパウダーを母体初乳に直接添加します。ブリックスレベルが15～24%の間にある場合、IgGレベルが一定しているコロストラムレプリケーサーで濃縮することで、質の悪い初乳を質の良い初乳に変えることができます。

ゲルフ大学で行われた新しい研究により、初乳を改善する有効な方法であることが証明された。この研究では、研究者は母乳の初乳を様々なブリックスレベルで給与し、最低レベルは15.8%ブリックス（1リットル当たり30gのIgGに相当）であった。

ブリックス 15.8% の母牛初乳を給与した子牛では、18.8% では受動免疫の移行に失敗した。

また、15.8%ブリックスから 26%ブリックスまで濃縮した初乳を給与したところ、受動免疫の移行は良好なレベルであったが、受動免疫の移行に失敗した子牛は 0%であった（濃縮しなかった場合は 18.8%）。

研究者らはまた、ブリックス 20.3% から 31.3 % に濃縮し、子牛に平均して優れた受動移行を達成した。実際、20.3% ブリックスの初乳を給与した子牛の受動移行率は 50% で、受動移行率は 6.25% であった。

20.3%の初乳を31.3%のブリックスに濃縮した後、62.5% の子牛が優れた受動移行を、0% がまずまずの受動移行を達成し、より高い受動移行レベルを達成することができた（50% のみ）。

優れた受動免疫移行を達成した子牛の罹患率が低いことを示す研究結果に基 づいても、エンリッチメント戦略は受動免疫移行を改善し、受動免疫移行に失敗した子牛の 割合を有意に減少させることが証明されました。

エンリッチメントは、手元にある母牛の初乳を使用し、コロストラム製品で品質を高める優れた方法です。

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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生まれたばかりの子牛は、環境条件の影響を非常に受けやすい。子牛が生後数日間を生き延びられるかどうかは、暑さと寒さ の両方のストレスが大きく影響します。母牛は天候に左右されますが、私たちは子牛に戦うチャンスを与える初乳を与えることができます。

出生後の低 IgG 消費による受動的移行不全が重大な影響を及ぼすことはご存知だと思いますが、初生仔牛の脂肪が新生仔牛の全体的な健康状態や成績にも影響を及ぼす可能性があることをご存知でしょうか？子牛も小型反芻動物も、新生動物は低温に敏感です。 しかし、新生児に寒冷ストレスを与えるには、周囲の冷たい空気はそれほど必要ではない。 サーモニュートラルゾーンとは、この現象を表す一つの方法である。これは、動物が体温を維持するために追加のエネルギー、代謝、生理的防御機構を必要としない温度範囲である。周囲温度が下限臨界温度（LCT）以下であれば、動物は体温を維持するために代謝熱産生を増加させる。気温が上臨界温度（UCT）を超えると、動物は体温を維持し、オーバーヒートを防ぐためにエネルギーを消費しなければならない。そして、そのための生理学的メカニズムにはエネルギーが必要である。

サーマル・ニュートラル・ゾーン

環境条件にはばらつきがあるものの、ほとんどの子牛の熱中性域は13.4℃/56°F～25℃/77°Fの間である。

つまり、13.4℃を下回ると寒冷ストレスが発生し、子牛はこれから述べる方法で体温を守らなければならなくなります。また、25℃を超えると熱ストレスが生じます。

例えば、寒い冬の夜、牛が子牛を産んだとしよう。気温は華氏10度です。

では、この動物が体温を守るためには何が必要なのだろうか？

言い換えれば、この新生児は身体機能を維持するのに十分な熱をどのように産生するのだろうか？その答えは、2つの重要な生理学的反応にある。
ひとつは震えによる熱発生であり、もうひとつは褐色脂肪組織（褐色脂肪とも呼ばれる）の代謝が関与する非震えによる熱発生である。この現象を証明する研究は80年代にまでさかのぼり、Vermorelら（1983年）は生まれたばかりの子牛を37℃の水浴に入れたところ、32℃で震えが始まったことを発見しました。つまり、生まれたばかりの子牛の場合、シバリングは視覚的に起こる可能性が高いのです。
新生仔羊を用いた研究によると、熱発生反応のうち約60%が震えによるもので、残りの40%が褐色脂肪代謝によるものであることが示されている（Carstens 1994）。 生まれたばかりの子牛は、そこで確かに震え、そして体内で最も強力な熱産生器官である褐色脂肪を利用する！ 興味深いことに、この子牛が持つ褐色脂肪は、出生時の体重の1-2%に過ぎないが、それでも熱発生能力の40%に相当する。 (面白い事実：信じられないかもしれないが、褐色脂肪は体重の1-2%とはいえ、実際の臓器である）。

熱生産を誘発するために、私たちは何ができるのか？

この子牛は、震えや褐色脂肪代謝によって体温を守る2つのメカニズムを持っているのだから、大丈夫なはずだろう？このまま立ち去って寝てもいいのだろうか？まあ、子牛が少なくとも立ち上がるようにした方がいいかもしれない。 Vermorelらが行った研究によると、生まれたばかりの子牛が10分間立つと熱産生が100%増加し、30分以上立つとさらに40%増加した。立っているだけで、筋肉の動きが活発になり、熱産生が誘発されるのである。

子牛を温めるために何か与えることはできますか？

もうひとつ、最も重要なことがある。初乳だ！初乳には免疫と組織成長をもたらす抗体と何百もの生理活性因子があるが、寒冷ストレスでは初乳脂肪が重要な役割を果たす。初乳脂肪はユニークな脂肪酸プロフィールを持ち、褐色脂肪細胞の基質となる。ある意味 褐色脂肪は、強力な熱を生み出す褐色脂肪のジェット燃料となる。 褐色脂肪細胞はコロストラムから脂肪酸を取り込み、燃焼の火花を散らして文字通り熱を生み出す。興味深いことに、コロストラムには他にも、より多くの褐色脂肪細胞を機能的な熱産生マシーンへと成熟させる生理活性因子が含まれています。すなわち、線維芽細胞成長因子（FGF）、インスリン様成長因子（IGF）、上皮成長因子（EGF）、血小板由来成長因子（PDGF）である。

従って、子牛が肉牛であろうと乳牛であろうと、体温が臨界下限温度（13.4℃/華氏 56 度）以下であれば、その子牛は肉牛になります、 子牛が初乳を飲むことは極めて重要です。 これで3つのことができる：

1.子牛を立ち上がらせるための豊富なエネルギーを供給する（活動によって熱産生が増加することを覚えておいてください）。

2.褐色脂肪細胞が熱を産生するのをジャンプスタートさせるために、ユニークなコロストラル脂肪を提供します。

3.初乳に含まれる大量の成長因子は、より多くの褐色脂肪細胞を勧誘する（ある意味、より多くのヒートマシンを作る）。

肉牛や乳牛の子牛に、初乳補充剤を熱発生のツールとして使用することは可能でしょうか？

代用初乳は、肉牛や乳牛が産生する母牛の初乳と同じなのでしょうか？ここからが難しいところです。残念ながら、すべての初乳が同じように作られているわけではありません。多くの初乳代替ミルクは、血液血清、乳清、乳清タンパク質濃縮物から作られており、初乳脂肪だけを主なエネルギー源としているわけではありません。脂肪源には、動物性脂肪、植物性油、ココナッツオイル、乳製品、パーム脂肪などがありますが、これらに限定されるものではありません。これらの脂肪は、コロストラル脂肪と同じ、あるいは独自の脂肪酸プロファイルを持っているわけではありません。したがって、脂肪もまた同じようにはつくられておらず、このことは褐色脂肪刺激という点で影響を及ぼすことが示されている。例えば、多価不飽和脂肪酸（オメガ3脂肪酸やオメガ6脂肪酸、魚油など）と飽和脂肪酸（獣脂、動物性脂肪、バターなど）の比較では、褐色脂肪に対するリクルート効果と刺激効果の両方があることが示されている（褐色脂肪細胞での熱産生を促進する重要な細胞成分（UCP1タンパク質含有量）に寄与するという意味で）。実際、Wilmsらの研究（2022年）では、コロストラル脂肪は全乳に比べて多価不飽和脂肪酸が多いことが示されている。オメガ3脂肪酸と呼ばれる多価不飽和脂肪酸は、全乳と比較して初乳の方が45%高かった（面白い事実：オメガ3脂肪酸の一種であるエイコサペンタエン酸（EPA）は、全乳と比較して初乳の方が73%高かった。）これには生理学的な理由があるようで、市販されている合成初乳代替食品に使用されている脂肪源の多くに疑問が持たれている。

コロストラムの代替品には何を求めるべきか？

コロストラムの代用品を使用する場合は、それが全牛のコロストラムとコロストラル脂肪から作られたものであることを確認してください！

コロストラム補充剤における初乳脂肪の重要性をさらに証明するために、低脂肪レベルのコロストラム補充剤に関する研究が行われた。コロストラム補充剤を利用する場合、初乳脂肪（純粋なウシ初乳由来）を含むだけでなく、十分な脂肪を含むことが重要である。

この研究では、脂肪分22%のコロストラム補充液と脂肪分5.7 %の脱脂コロストラムを比較した。どちらの補充液もIgG/抗体の量は同じで、違いは脂肪含有量だけであった。この試験は、震えを刺激せず、褐色脂肪代謝のみを刺激するようにデザインされた（最低温度13.4℃、平均温度21.4℃）。

結果は驚くべきものだった！脱脂初乳を与えた子牛は、生後 90 日間の呼吸器疾患が 50% 増加し、死亡率が 6% 増加した。また、直腸温が低く、立っている時間が短く、横になっている時間が長かった。 興味深いことに、脱脂初乳を与えた子牛は生後 4 ヶ月の体重増加が少なかった。 全脂肪初乳を給与した子牛は、90 日齢時の体重増加量が 6.6kg/14.6 ポンド増加し、 127 日齢時の体重増加量は 10kg/22 ポンド増加した。 これは、最初の 90 日間で 0.07kg/d（0.154 ポンド/日）、127 日齢で 0.1kg/d（0.22 ポンド/日）の平均日 増体重の差に相当する。体重増加への影響は計り知れず、経済的には、全脂肪と全脂肪のコロストラム補充液にお金をかけることができるということです。

保守的なアプローチとして、生後127日目まで飼養するのに1日1頭当たり$1.50かかり、目標体重が129kg/284ポンドだとします。

子牛が 40kg/88lbs で生まれ、体重が 0.71kg/d （1.56 ポンド/日）増加したとすると、129kg/284lbs に達するには、（129kg/284lbs-40kg/88lbs = 89kg/196lbs の総体重増加）（89kg/196lbs の総体重増加÷0.71kg/d（1.56 ポンド/日） = 125 日かかることになります。では、その 127 日間で子牛の体重が 0.81kg/d（1.79 ポンド/日）増加したとしましょう。

計算すると以下のようになる：(129kg/284ポンド-40kg/88ポンド＝89kg/196ポンドの総体重増加）（89kg/196ポンドの総体重増加/.81kg/日（1.79ポンド/日）＝109日で129kg/284ポンドに達する。その差は 125d-109d = 16 日となります。つまり、子牛の体重増加が 0.07kg/d（1.154 ポンド/日）多ければ、目標の 129kg/284 ポンドに 16 日早く到達することになります。子牛の飼料代が 1 日あたり $1.50 だとすれば、飼料を与える日数が減れば、$24.00 の節約になります。純粋な初乳脂肪を含む全脂肪初乳代用品に、$24.00 ドル多く費やす余裕がありますか？

褐色脂肪が新生児にとっていかに重要であるか、初乳が体温調節に果たす役割がいかに大きいかは、もうお分かりだろう。コロストラムの代用品が使えないわけではありませんが、全牛の初乳から作られ、脱脂されていたり、他の脂肪源が使われていないことを確認することが大切です。

 

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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子牛は、生後数ヶ月間の免疫保護を初乳の摂取に頼るという点でユニークな種です。屈折率計は、個々の子牛の免疫移行を迅速かつ簡単に測定する正確な方法なのでしょうか？

初乳を十分に摂取することは、子牛の健康、生存率、成績、そして収益性を左右する 唯一重要な要素です。受動的移行とは、子牛が初乳を介して牝牛から免疫を獲得する現象を表すのに、 一般的に使われています。

子牛に初乳を飲ませました。子牛に十分な免疫力があるかどうか、どうすれば確認できますか？

多くの生産者は、子牛が受動的移行に失敗したかどうかを目視で判断する方法があるのかどうか、よく質問します。しかし、通常は血液サンプルを採取し、サンプルを遠心分離して血清を採取し、直接または間接的に IgG のレベルを測定する必要があります。

血清中のIgGを間接的に測定する方法は、血清総タンパク質（STP）を測定する光学屈折計またはデジタル屈折計を利用することです。この方法は、特定の日に血液を採取し、遠心分離し、血清を屈折計の上に置けば、その時点で結果がわかるため、子牛側の検査と考えられています。

血清総タンパク質は簡単に分析でき、酪農場で入手できるため、多くの酪農家は子牛の 受動的移行レベルを判定するためにこの検査に頼ってきました。この検査は長年行われており、有用なツールであるとみなされていますが、検査の限界のため、結果が誤って解釈されることがよくあります。

STPのデータを重視する前に、屈折計の仕組みと検査した血清の組成を理解することが重要です。信じられないかもしれないが、屈折計はもともとワイン、ビール、メープルシロップ産業で使用するために設計されたもので、水に含まれるショ糖や砂糖の量を測定するためのものである。屈折計自体は、光学式であれデジタル式であれ、光源とプリズムに依存している。
Brix屈折計は、初乳および血清中のIgG含量を間接的に測定するために、農場での使用が検証されている。

母牛の初乳を特別に給与された子牛では、血清総タンパク質が子牛の IgG レベルと高い相関性があることが証明されており、受動的移行障害（FTP）の同定にも使用されています。
しかし、血清総タンパク検査は、個々の子牛の受動的移行状態を判定するためのものではありません。

血清総タンパク検査は、個々の子牛の受動的移行状態に関する質問に答えるため のものではありません。むしろ、この検査の正しい利用法は、個体群レベ ルで、1 つの質問に答えることです：私の初乳管理プログラムはうまくいっているのか、それともうまくいっ ていないのか？Godden et al., 2008 はこのことを最も適切に説明しており、検査結 果はグループまたは牛群単位で解釈する必要があり、FPT を持つ子牛の相対的な 割合を正確に反映することができると述べています。

正確な検査方法と結果の意味は？

適切に実施するためには、少なくとも 12 頭の臨床的に正常な子牛から血清検体を採取する必要があります。
(生後 24 時間から 7 日齢までの間に（疥癬や呼吸器疾患がない）FTP を発症した子牛の割合。Godden ら（2008）はまた、FTP を有する子牛の割合を決定するための 2 つのカッ トオフ法について言及している。1 つの目標は、検査した子牛のうち 80% 以上が 5.5g/dL を満たすこと、もう 1 つの目標は、子牛のうち 90% 以上がカットオフ値 5.0g/dL を超えることである。

FPT を発症した子牛が不釣り合いなほど多い場合は、初乳管理プログラ ムに問題がないか調査することを推奨します。

さらに、血清中の真のIgG濃度を決定するためのゴールドスタンダード法である放射状免疫拡散法（RID）を利用することも考えられる。

「...このテストの正しい利用法は、集団レベルで、一つの質問に答えることです：私の初乳管理プログラムはうまくいっているのか、それともうまくいっていないのか？"

初乳の代用品を給与した後、屈折率計を使って子牛を検査できますか？

初乳代用品を給与している場合、集団レベルであっても、受動的移行状態を判断 するために血清総タンパク検査を利用すべきではない。Lopez ら（2021）が最近実施した研究では、母牛に初乳を給与した子牛と、初乳をベース とした代用初乳を給与した子牛の血清総タンパク質の使用精度を調べました。初乳ベースの初乳代用品を給与した子牛を考慮した場合、血清 IgG は不正確であるか、相関性が低かった。

そのため、初乳代用品を給与した子牛の 受動レベルの状態をモニタリングしたり、判定したりする際に、血清総タンパク 質を利用することは推奨されません。代わりに放射状免疫拡散試験を行うことを推奨します。

血清総蛋白値に影響を及ぼし、屈折計による検査結果を変化させる可能性のある他の因子はどれか？

また、血清の組成と、血清中の検査項目の限界を考慮することも重要である。血清総タンパク質に基づいて受動的移行の状態を理解しようとする場合、以下の仮定を忘れてはならない：

1. 初乳の固形分には、約50%のタンパク質が含まれている（その半分までがIgG1）。
2. 初乳のタンパク質はすべて非選択的に血中に吸収される（IgGだけではない）。
3. 初乳を大量に吸乳している子牛は、血清総タンパク濃度を測定することで 判別することができ、総タンパク濃度が高い子牛は IgG1 濃度も高い。これはある程度正しいのですが、血清総タンパク質は初乳摂取後に測定されることも忘れてはいけません。

したがって、血清総タンパク質も以下の影響を受ける：

1. 血清タンパク質のプリサックル値
2. 吸収されたタンパク質の量（1で述べた通り）。初乳の吸収量が多いほど、タンパク質の吸収量も多い。
3. 初乳中のIgG濃度が高いほど、血清蛋白質も高くなる。
4. 採血のタイミング。

コロストラムを摂取した子牛は、コロストラムを摂取していない子牛よりも総タンパク質が 低い場合がある（Tennant et al AJVR 1969 30: 345）。これは、アルブミン濃度の差に よるもので、生後 1 日の子牛では 1.9 ～ 3.4 g/100 ml である（Schultz et al 1971, 35:93）。初乳を摂取する前の子牛の血清総タンパク質が高いのは、このためである。

下図に、血清中に含まれるその他のタンパク質の概要を示します。初乳の固形分総量を測定するのと同様に、子牛血清中の総タンパク質を測定する場合、血清タンパク質が高ければ血清IgGも高く、逆もまた同様であると仮定します。しかし、IgG はひとつの成分に過ぎず（主成分ではない）、他の成分の変化も血清総タンパク質量に影響します。言い換えれば、例えば子牛がアルブミンレベルの高い状態で生まれた場合、血清総タンパク質は高く表示され、IgGはタンパク質レベルの高さを示さない可能性があります。

まとめると、子牛の免疫状態を測定することは重要ですが、最も実用的 で正確な方法は、牛群レベルで測定することです。一頭の子牛の結果に固執するのではなく、健康な子牛がいるかどうかを自問 してみましょう。牛群レベルで免疫の移行を見ることで、初乳プログラムと子牛の健康状態を知ることができます。

血清総蛋白質検査

DO'S（ドーズ	禁止事項
少なくとも12頭の子牛の群れの状態を評価する。 カテゴリーレベルを理解する 12～36時間の間に検体を採取する 母体初乳プログラムの一般的な評価を得るために使用する。	× 個々の子牛の評価 × 48 時間後または病気の子牛に検体を採取する。 × 子牛の保険料支払いにSTPを使用 × コロストラム補充プログラムの成功をテストするために使用する。

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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生まれたばかりの子羊や子供は、唯一の栄養源として初乳を必要とします。牝羊が十分な高品質の初乳を与えられない場合、生産者は非常に効果的で便利な代替手段を手に入れることができます。

 

初乳とは何ですか？

初乳は雌牛／雌牛の乳腺から分泌される最初の分泌物であり、新生児にとって重要かつ最も重要な栄養源である。このミルクは栄養価が高いだけでなく、発育を助け、感染症から身を守る抗体源でもあるため、子孫の生存と健康にとって重要な成分です。初乳はエネルギー源であるため、新生児が生き延びるために体温を維持するのに役立つ。初乳はまた、生理活性因子、細胞、ホルモンなどの多様な成分により、子羊の体や臓器の成長と発育、将来の母乳生産に貢献します。出生直後から十分な量の高品質な初乳を与えることは、短期的にも長期的にも新生児を保護します。理想的には、新生児には出生後できるだけ早く（30分以内）初乳を与えるべきであり、この最初の摂取が出生後2時間を超えないように注意することである。

反芻動物の胎盤の種類により、妊娠中の母体から胎児への受動免疫グロブリンの移行は障害される。したがって、初乳が初期獲得免疫の唯一の供給源となる。従って、新生仔/仔羊の生存率は、出生後数時間の初乳の有無に左右される。

初乳はいつ、どのくらい必要ですか？

仔牛や子羊の罹患率や死亡率は世界的な課題であり、農場の福祉や生産性に影響する。十分な量の初乳を与えることは、新生児に危害を及ぼす感染症による損失を減らす鍵である。ほとんどの集約型酪農場では、子羊や子供は出生直後に母羊から引き離され、人工飼育ユニットに移されます。良質で十分な量の初乳をできるだけ早く与えることは、子羊の健康にとって不可欠である。

子羊と子供は、出生後できるだけ早く、少なくとも 50ml/kg の良質な初乳 （>25% Brix）を与えなければならない。この最初の給与は、出生後 2 時間以内でなければならない。24 時間以内に、新生仔羊／子供は初乳 200ml/kg 体重相当（AHDB）または IgG 30g 以上を摂取しなければならない。したがって、体重 3kg の新生児は、理想的には生後 1 日目に少なくとも 600ml の初乳を飲まなければならない。この量は2～3回の食事に分けることができます。しかし、この量を摂取できない場合、十分な受動免疫移行を確保するための推奨摂取量は、新生児体重の10～15%である。つまり、体重3kgの子羊は、生後1日目に少なくとも450mlを2～3回に分けて摂取する必要がある。

初乳の品質が悪かったり、十分な量がなかったり、あるいは初乳を迅速に供給するための農場スタッフが不足していたりするために、初乳に関する問題が生じることがある。このような問題はすべて、新生児の健康を害し、感染症や生後数ヶ月の発育不良にさらす可能性がある。そのため、新生児が十分な量の高品質な初乳を確実に摂取できるよう、乾燥初乳の投与プロトコルが開発されました。

乾燥牛初乳は使えますか？

市販のウシ乾燥初乳は、すでにいくつかの飼育施設で使用されている。ウシの初乳とヒツジ・ヤギの初乳の両方に由来する IgG 抗体の吸収効率が高いことが、研 究によって明らかになっている。つまり、牛の初乳を新生児や子羊に与えれば、優れた結果が得られるということです。

全牛初乳の代用品を使用することで、離乳前の罹患率や死亡率が減少し、抗生物質の使用量も減少します。その結果、1日の体重増加率が向上し、子羊の販売頭数が増加します。さらに、コロストラムは下痢を防ぎ、全体的な健康と体重増加を改善することが知られています。

 

 

ジュリアナ・メルグ・レアン（DVM, MSc.

SCCL獣医テクニカルスペシャリスト
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ハイム・レイボビッチ博士

小型反芻動物生産システム・コンサルタント
[email protected]

 

ジョアナ・パルハレス・カンポリーナ、DVM、MSC、DsC。

獣医師／研究獣医師
[email protected]

 

市場には、子牛が直面するさまざまな問題を手っ取り早く解決するための、ペースト状の製品が数多く出回っています。本当に効果があるのだろうか？もし効果がないのなら、代わりに何を与えたらいいのだろうか？

イントロ

サスカトゥーン・コロストラム・カンパニーの獣医技術サービス部長として、私はよく、市販されている様々なチューブのペーストについて、また、それらが初乳の補充や補給と比較してどうなのかについて、意見を聞かれることがあります。このような話をするためには、生産者が何を目標とし、どのような方法でペーストを使用しようとしているのかを理解することが重要です。生産者が求めているのは、エネルギー源となるペーストなのか、あるいは直接給与される微生物を含むペーストなのか。それとも、初乳（免疫グロブリン）のサプリメントが欲しいのでしょうか？これらの目標を個別に見ていくと、これらのチューブは通常、期待される結果を出すには不十分であることがわかります。

エネルギー

市販されているチューブのほとんどは、タンパク質（0～3.5g CP）と脂肪（0～4g CF）をごくわずかしか含んでいない。これらのチューブに含まれる脂肪は、コーン油、獣脂などの代替脂肪であることが多く、コロストラル脂肪よりも生物学的利用能の低い脂肪である。コロストラル脂肪が含まれているものでも、含有量が少ないため、ほとんど効果がない。対照的に、初乳全体を見ると、子牛に与える量にもよりますが、168～672gの粗タンパク質と70～280gの粗脂肪が初乳脂肪として含まれています。

直送微生物

子牛の消化管内の常在腸内細菌叢の数は、通常、異なる種で数千に上ります。ほとんどの直接給与微生物（DFM）ペーストは、1～3種の主要な腸内細菌を供給します。コロストラムには、すべての菌株をサポートする40種類以上の天然プレバイオティクスが含まれています。

初乳サプリメント＋免疫

子牛が成長するためには、生後数時間で300gのIgGを摂取する必要がある。これらのチューブ製品の免疫グロブリン濃度に関しては、インパクトのある量のIgGを供給するには不十分です。ほとんどの「コロストラムサプリメント」チューブは、3.5～13gのIgGを供給します。繰り返しになりますが、コロストラムを比較すると、投与量にもよりますが、50～200gのIgG抗体が摂取できます。結論として、牛の初乳は子牛に与えられる免疫グロブリンと栄養素の最良の供給源です。生産者が子牛の健康増進のための選択肢を検討する際、初乳管理は最重要課題であるべきです。

 

 

トラビス・ホワイトDVM博士

SCCL獣医技術サービス部長
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初乳を与える場合、生産者には食道チューブフィーダーと乳首ボトルの2つの方法がある。この2つの方法のどちらを使うかは、時間、設備、個人的な好みが影響します。今月のコロストラムカウンセルは、新生子牛への初乳給与について、食道チューブ給与とボトル給与の効果について説明します。

 

コロストラム・カウンセル
食道チューブによる初乳哺乳と哺乳瓶による初乳哺乳

生まれて間もない子牛に、生後数時間以内に良質な初乳を与えることは、子牛の健康と成 功に不可欠です。初乳を子牛に与える方法には、食道チューブフィーダーと乳首ボトルの 2 種類があります。チューブフィーダーは、大量の初乳を数分で与えることができるため、一般的 に時間効率の良い方法と考えられています。対照的に、乳首ボトルからの初乳給与は時間がかかるが、子牛が哺乳瓶から初乳を吸うのを模倣しているため、「より自然」と考えられている。

チューブフィーダーは時間効率の良い方法ですが、チューブで初乳を給与すると、初乳 がルーメンに入り、腸への初乳の供給が遅れるという懸念があります。特に、チューブ給餌の子牛の血中 IgG 濃度は、乳首 哺乳瓶で給餌した子牛よりも低いことから、チューブ給餌の場合、初乳がルーメンに入 る可能性を示唆する先行研究が 2 件ある（Kaske ら、2005；Godden ら、2009）。しかし、これらの研究では「第四胃空洞化率（abomasal emptying rate）」を実際には測定していない。さらに、初乳の給与方法によって影響を受ける可能性のある因子は豊富にあるが、これまでの研究では、給与方法が IgG にどのような影響を与えるかにのみ焦点が当てられていた。

アルバータ大学の研究者たちは、このような大きな知識のギャップを埋めるために、食道チューブで初乳を与えた場合、腹腔排出率、血中IgG、グルコース、インスリン、腸内ホルモン（グルカゴン様ペプチド-1（GLP-1）およびGLP-2）濃度が、乳首哺乳瓶で初乳を与えた子牛と比較して影響を受けるかどうかを調べようとした。

方法

この研究（Desjardins-Morrissette et al., 2018）を実施するため、20頭のホルスタイン種雄牛の子牛に、3Lの初乳を乳首付きボトルから与えるか（BOTTLE calves）、3Lの初乳を食道チューブから与えた（TUBE calves）。給与方法に関わらず、両群とも生後 2 時間に同じ初乳（Headstart, SCCL, IgG 総量 200g）を給与した。初乳給与後、子牛には生後 12 時間に 3L の低温殺菌全乳を乳首哺乳瓶で与え、以後 12 時間ごとに与えた。初乳給与後、頻回に採血を行い、腹腔空洞化率、血中 IgG、グルコース、インスリン、GLP-1 および GLP-2 濃度を推定するため、生後 1 時間に頸静脈カテーテルを挿入した。

IgGと胃内容排出

まとめると、IgG 濃度と腹腔排出率には、チューブ給与の子牛とボトル給与の子牛で 差は見られなかった（表 1）。以前の研究（Godden ら、2009 年）では、初乳 1.5L を経管給与した場合にのみ IgG 濃度の低下が認められ、初乳 3L を経管給与した場合は認められなかった。離乳前の子牛のルーメンには最大 400ml の液体が貯留すると推定されており（Chapman et al.基本的に、少量（例えば 1.5L）の初乳をチューブで給与した場合、ルーメンに残 る食事の割合（~26%）が多くなり、大量（例えば 3L）を給与した場合は、ルーメンに残 る食事の割合（~13%）が少なくなり、IgG 濃度に影響を与えない可能性が高い。

この試験では、高品質の初乳が給与されたことも重要である。特に、各子牛は 3L の給餌で 200g の IgG を摂取しており、これは推奨最低量 （100g）を大きく上回っている。質の異なる初乳を給与したことが、今回の結果に影響したかどうかは不明である。ともあれ、著者らは、十分な量の良質な初乳を給与し、チュービングを 適切に行えば、経管栄養でも哺乳瓶栄養でも、子牛に初乳を与えることで十分な受動 的免疫伝達が行われるはずであることを示唆しています。

グルコースとインスリンの濃度

子牛に初乳を経管栄養すると、哺乳瓶で初乳を与えた子牛と比較して、グルコース とインスリンの曲線下面積（AUC）が増加した（表 1）。すべての子牛に同じ初乳を与えたため、乳糖（~2.7%、Godden ら、2009）とグルコース の量も同じであった。従って、この差がグルコースの給与量の違いによるものでないとすれば、経管栄養の子牛が哺乳瓶栄養の子牛（17.6 分）よりも短時間（5.2 分）で初乳給与食を摂取したことによるものと考えられる（表 1）。牛では、30% のグルコースが小腸で利用され、残りの 70% が消化され て血中に現れることが証明されている（Richards ら、1999）。TUBE の子牛は初乳を短時間で摂取したため、初乳が小腸に入る時間が早まった。そのため、血液中に入るブドウ糖の量が増え、小腸で利用される量が減ったと 考えられる。その結果、TUBE の子牛はグルコース濃度とインスリン濃度が高くなった。

興味深いことに、TUBE の子牛は BOTTLE の子牛（2.47 L）に比べ、初乳の間、哺乳瓶でミルクを飲む量が多かった（2.96 L）（表 1）。著者らは、おそらく TUBE の子牛は初乳を与えられた後、小腸で使用されるグルコースが少なかったため、初乳時に哺乳瓶でミルクをより多く消費したのではないかと推測している。

グルカゴン様ペプチド1および2の濃度

この試験以前に、新生子牛の GLP-1 と GLP-2 の血中濃度が報告されたことはなく、ましてや初乳給与に対す る反応が報告されたことはない。GLP-1 と GLP-2 には治療効果は認められなかったが、コロストラム食後には有 意な時間効果が認められた（図 1）。GLP-2 は腸の発育を刺激することで知られており（Taylor-Edwards ら、2011）、GLP-1 は子牛の血中インスリン濃度を上昇させ、その結果、エネ ルギー消費のためにグルコースを取り込むことが示されている（Fukumori ら、2012a）。これらのホルモンの小腸からの分泌は、脂質や炭水化物などの栄養素によって刺激され るため（Burrin ら、2001）、初乳を与えることで未熟な新生仔牛の腸内で分泌が開始される。したがって、治療効果は観察されなかったが、この研究から、初乳はこれらの腸 ペプチドホルモンの作用を通じて子牛の腸の発達に有益な影響を与える可能性が示唆された。

メッセージ

子牛に 3L の初乳を食道チューブフィーダーで与えても、乳首付き哺乳瓶で与えても、 腹腔排出、血中 IgG、GLP-1、GLP-2 濃度に差は認められなかった。しかし、経管栄養の子牛は、哺乳瓶栄養の子牛と比較して、血中グルコース濃度が高くなり、初乳の消費量が増加した。これらの結果は、経管栄養の子牛は小腸のエネルギー基質とし て利用できるグルコースが少ないために起こったと考えられるが、さらなる研究が必 要である。

アマンダ・フィッシャー、MSc.

SCCL、アルバータ大学リサーチ・アシスタント
[email protected]

コー・オーサー
マライア・デジャルダン＝モリセット（MSc.

 

参考文献
Desjardins-Morrissette, M., J.K. van Niekerk, D. Haines, T. Sugino, M. Oba, and M.A. Steele.2018.初乳の経管栄養と哺乳瓶栄養が新生子牛の IgG 吸収、第四胃排出、血漿中ホルモン濃度に及ぼす影響。J. Dairy Sci. 101(5):4168-4179.
Burrin, D.G., Petersen, Y., Stoll, B., Sanglld, P. 2001.グルカゴン様ペプチド2：栄養応答性腸管成長因子。J. Nutr.
Chapman, H.W., Butler, D.G., Newell, M. 1986.子牛への食道哺乳による水分投与経路。Can.J. Vet.50(1)：84-87.
福森亮介、三田貴志、杉野貴志、帯津隆彦、谷口和彦、2012.離乳前後の子牛におけるグルカゴン様ペプチド-1（7-36）アミドの血漿中濃度と作用．Domest.Anim.Endocrinol.43: 299-306.
Kaske, M., Werner, A., Schberth, H.J., Rehage, J., Kehler, W. 2005.子牛の初乳管理：ドレンチングと哺乳瓶給与の効果。J. Anim.Physiol.Anim. Physiol.Nutr. 89(3-6)：151-157.
Godden, S.M., Haines, D.M., Konkol, K., Peterson, J. 2009.子牛における免疫グロブリンの受動的移行を改善する。授乳方法と初乳給与量の相互作用。J. Dairy Sci. 92 (4)：1758-1764.
Richards, C. J. 1999.肉牛の炭水化物同化および代謝における小腸タンパク質の影響。Ph.D. Diss.Univ. Kentucky.
Taylor-Edwards, C.C., Burrin, D.G., Holst, J.J., Mcleod, K.R., Harmon, D.L. 2011.グルカゴン様ペプチド-2（GLP-2）は、反芻期の子牛の小腸血流と粘膜成長を増加させる。J. Dairy Sci. 94: 888-898.

 

SCCLのほとんどの製品は「動物用生物製剤」に指定されています。この重要な分類により、当社の製品は、コロストラム製品に適用される世界的に最も高い規制基準を満たしていることが保証されます。

動物用生物学的製剤とは？

動物用生物製剤は、一般的に「動物の感染症の予防、治療、診断に使用されるワクチン、抗体製剤、体外診断用検査キットなどの動物用医薬品」と定義される。動物用生物製剤は、異なる作用機序を持つ動物用医薬品とは異なり、感染症に対する免疫学的反応を特異的に刺激または関与させる。しかし、SCCLはカナダで製造しているため、カナダ食品検査局（CFIA）、カナダ動物用医薬品センター（CCVB）の規制を受けています。牛の初乳は、カナダでは動物用生物製剤としてのみ販売されており、SCCLがカナダ国内で販売するか、子牛、子羊、ヤギの製品を世界中に輸出するかに関わらず、動物用生物製剤に関する規制と基準を遵守しなければなりません。動物用生物製剤として、牛初乳は抗体製品（具体的には、牛免疫グロブリンGまたは牛IgG）に分類され、新生子牛、子羊または山羊の「受動的移行障害（FPT）の予防を助ける」という効能があります。

資格はどのように取得するのですか？

動物用生物製剤を製造する施設およびその施設で製造される各製品は、CFIA-CCVBによるライセンスが必要です。施設または事業所ライセンスおよび製品ライセンスは、初回承認後、毎年更新する必要がある。認可を得るには、製品をカナダ国内で販売または流通させる前、あるいは世界中に輸出する前に、各製品が純度、効力、安全性、対象種における有効性、およびラベルの指示に従う要件を満たしていることを証明する包括的な申請書を提出し、CFIA-CCVBによる審査・承認を受けなければなりません。製造施設または事業所は、最終製品の試験、包装、保管または受託製造に使用される契約施設を含め、包括的な立入検査を受けなければなりません。この施設事前許可検査は、CFIA-CCVBが実施し、施設および製品の両ライセンスを維持するために、許可を受けた施設およびその契約施設に対して、物理的および管理的な検査が継続的に義務付けられています。現在、SCCLは最低12ヶ月ごとにCFIA-CCVBの検査を受けています。

動物用生物学的製剤は、どのような基準を満たす必要があるのでしょうか？

動物用生物製剤としてのコロストラムは、規制当局により承認された試験により、特定の仕様または制限を持つ定義された微生物から純粋であること、またはフリーであること、効力があり、有効成分またはウシIgGが機能的であり、有効性が証明された指示された量が存在すること、対象種に使用しても安全であり、不当な反応を引き起こしてはならないこと、そして、指示された通りに使用された場合、有効であり、承認された主張により期待され記載された保護または利益を提供することを保証するための要件を満たさなければなりません。動物用生物学的製剤の純度、効力、安全性および有効性は、規制当局が審査し、定められた基準または要件に照らして測定された確かな研究データ、試験結果および観察結果を提出することにより、許可前に規制当局に証明されなければならない。

 

マニュエル・F・チャモロ、DVM、MS、PhD、DACVIM
カンザス州立大学獣医学部畜産・フィールドサービス助教授、SCCLテクニカル獣医コンサルタント