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コロストラム・カウンセル - コロストラムの強化:母乳の質を保証するために母乳を増やす

多くの酪農場が、既にある初乳を使いたいと考えているが、初乳が完璧でないことが多い。初乳を与える新しい方法によって、生産者は子牛に与える前に母牛の初乳の質を高めることができる。

初乳は子牛の生存と成績に不可欠であり、生涯の生産性に影響を与えることが広く知られるようになった。

初乳の管理は通常、4つの主要なポイントに重点を置いて初乳の管理とプロトコールの実施を行う:

1.投与のタイミング(最初の2時間以内と12時間以内の2回目の授乳)

2.初乳の質(IgG抗体の濃度が50g/L以上)

3.初乳の清浄度(低病原体負荷または低細菌数)

4.初乳の量(通常、体重の 10% (kg))。

これらの管理面は全て等しく重要です。例えば、4 つのうち 3 つはうまく管理できていても、子牛の健康状態が悪けれ ば、酪農家は淘汰されます。例えば、初乳の時期、初乳の清浄度、初乳の量が全て良好に管理されてい るにも関わらず、初乳の抗体量が不足しているとします。子牛が初乳の抗体を十分に得られなかったり、全く得られなかったりすると、生後 60 日間で排膿、呼吸器疾患、全死亡のリスクが 4 倍以上に増加します。これはある意味、子牛の牝牛が初乳を介して子牛に免疫力を伝えているためで、受動的移行と呼ばれる現象もこのためです。今回は、初乳の質または抗体・IgGの濃度に注目しましょう。適切な抗体レベルについて説明しますが、重要なことは以下の通りです。 初乳は単なる抗体ではありません。初乳には、何百もの生物活性因子、天然のプレバイオティクス、栄養素、ビタミン、微量ミネラルが詰まっています。

初乳中の抗体またはIgG濃度はどのように測定するのですか?

大腸抗体/IgG 濃度を測定する最も標準的な方法は、ラジアル免疫拡散法と呼ばれる高度に技術的な実験室での方法ですが、農場での間接的な測定方法としては、光学式またはデジタル式のブリックス屈折計があります。繰り返しますが、これらの装置は真のコロストラルIgG含量を「間接的」に測定するもので、その精度は実に約80%です。ブリックスレベル 22% の初乳は、1L あたり約 50g の IgG を含有していることになります。ホルスタインの子牛の場合、体重の 10%(.1 X 40 = 4L)、ブリックス 22%(50g IgG/L x 4 = 200g IgG)の初乳を与えるというのが、長年の経験則となっています。しかし、新しい推奨事項では、子牛の罹病率や受動免疫の移行失敗率 (FTPI)は、初生仔牛の抗体/IgG を多く与えることで減少するとしています。実際、この新勧告では、優れた受動免疫移行を達成するために、 300g の IgG を与えることを目標としています。では、ブリックスの観点からはどうなのでしょうか? つまり、ブリックス値が24%ブリックス以上の初乳を選別するために、農場での基準を引き上げる必要があるということです。

初乳を給与するごとにブリックスを測定すべきか、それとも個々の牛の初乳を搾乳するごと に測定すべきか?

答えはイエス。なぜなら、初乳の抗体濃度は非常にばらつきがあるからです。実際、牛によって遺伝的な違いがあり、乾乳牛の栄養状態、季節性、分娩数、初乳を採取した時期など、様々な要因が初乳のばらつきの原因となっています。長年の研究により、30%以上の初乳の抗体が50g/L以下であることが示されています(これは、22%ブリックス=50g/L IgGという古い基準に基づいていることを忘れないでください)。2014年にNational Health Monitoring Studyが行った最近の調査では、約23%の初乳のブリックスが22%以下であることが示されました。新基準では、初乳のブリックスレベルが24%を超えるものを給与するように示されているため、この点を考慮する必要がある。これは、初乳がブリックス 22% 未満では価値がないということでもあるのでしょうか?24 %ブリックス以下の初乳を使用するにはどうしたらいいでしょうか?まず第一に ブリックスレベルが15-16%以下の初乳は廃棄すること。 Brix がこのレベルであれば、初乳に含まれる IgG が 1 リットル当たり 30g 未満であり、子牛に十分な免疫力を与えていないことを示しています。

では、初乳のブリックス検査が15~24%ブリックスだったらどうでしょう?

ひとつの解決策は、この初乳を生後6~12時間の間に2回目の授乳に使うことである。しかし、「エンリッチメント」と呼ばれる新たなアプリケーションを使えば、効果的な授乳が可能である。

解決策はある!....エンリッチメント!...:

エンリッチメントでは、正確な量のコロストラムレプリケーサーパウダーを母体初乳に直接添加します。ブリックスレベルが15~24%の間にある場合、IgGレベルが一定しているコロストラムレプリケーサーで濃縮することで、質の悪い初乳を質の良い初乳に変えることができます。

ゲルフ大学で行われた新しい研究により、初乳を改善する有効な方法であることが証明された。この研究では、研究者は母乳の初乳を様々なブリックスレベルで給与し、最低レベルは15.8%ブリックス(1リットル当たり30gのIgGに相当)であった。

ブリックス 15.8% の母牛初乳を給与した子牛では、18.8% では受動免疫の移行に失敗した。

また、15.8%ブリックスから 26%ブリックスまで濃縮した初乳を給与したところ、受動免疫の移行は良好なレベルであったが、受動免疫の移行に失敗した子牛は 0%であった(濃縮しなかった場合は 18.8%)。

研究者らはまた、ブリックス 20.3% から 31.3 % に濃縮し、子牛に平均して優れた受動移行を達成した。実際、20.3% ブリックスの初乳を給与した子牛の受動移行率は 50% で、受動移行率は 6.25% であった。

20.3%の初乳を31.3%のブリックスに濃縮した後、62.5% の子牛が優れた受動移行を、0% がまずまずの受動移行を達成し、より高い受動移行レベルを達成することができた(50% のみ)。

優れた受動免疫移行を達成した子牛の罹患率が低いことを示す研究結果に基 づいても、エンリッチメント戦略は受動免疫移行を改善し、受動免疫移行に失敗した子牛の 割合を有意に減少させることが証明されました。

エンリッチメントは、手元にある母牛の初乳を使用し、コロストラム製品で品質を高める優れた方法です。

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
[email protected]

 

参考までに:
新生ホルスタイン子牛のIgG吸収に及ぼすコロストラム補充液による低・中質初乳中のIgG濃縮の効果
A.J.ロペス、J.エチェベリー=ムネラ、H.マッカーシー、A.C.ウェルボレン、A.ピネダ、M.ナゴルスケ、D.L.ルノー、M.A.スティール
J Dairy Sci. 2023 May; 106(8):3680-3691
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022030223001066#:~:text=Overall%2C%20milk%20consumption%20for%20feedings,h%20(P%20%3D%200.99).

コロストラム・カウンセル - 子牛の生後数時間に熱発生が果たす重要な役割。

生まれたばかりの子牛は、環境条件の影響を非常に受けやすい。子牛が生後数日間を生き延びられるかどうかは、暑さと寒さ の両方のストレスが大きく影響します。母牛は天候に左右されますが、私たちは子牛に戦うチャンスを与える初乳を与えることができます。

出生後の低 IgG 消費による受動的移行不全が重大な影響を及ぼすことはご存知だと思いますが、初生仔牛の脂肪が新生仔牛の全体的な健康状態や成績にも影響を及ぼす可能性があることをご存知でしょうか?子牛も小型反芻動物も、新生動物は低温に敏感です。 しかし、新生児に寒冷ストレスを与えるには、周囲の冷たい空気はそれほど必要ではない。 サーモニュートラルゾーンとは、この現象を表す一つの方法である。これは、動物が体温を維持するために追加のエネルギー、代謝、生理的防御機構を必要としない温度範囲である。周囲温度が下限臨界温度(LCT)以下であれば、動物は体温を維持するために代謝熱産生を増加させる。気温が上臨界温度(UCT)を超えると、動物は体温を維持し、オーバーヒートを防ぐためにエネルギーを消費しなければならない。そして、そのための生理学的メカニズムにはエネルギーが必要である。

サーマル・ニュートラル・ゾーン

環境条件にはばらつきがあるものの、ほとんどの子牛の熱中性域は13.4℃/56°F~25℃/77°Fの間である。

つまり、13.4℃を下回ると寒冷ストレスが発生し、子牛はこれから述べる方法で体温を守らなければならなくなります。また、25℃を超えると熱ストレスが生じます。

例えば、寒い冬の夜、牛が子牛を産んだとしよう。気温は華氏10度です。

では、この動物が体温を守るためには何が必要なのだろうか?

言い換えれば、この新生児は身体機能を維持するのに十分な熱をどのように産生するのだろうか?その答えは、2つの重要な生理学的反応にある。
ひとつは震えによる熱発生であり、もうひとつは褐色脂肪組織(褐色脂肪とも呼ばれる)の代謝が関与する非震えによる熱発生である。この現象を証明する研究は80年代にまでさかのぼり、Vermorelら(1983年)は生まれたばかりの子牛を37℃の水浴に入れたところ、32℃で震えが始まったことを発見しました。つまり、生まれたばかりの子牛の場合、シバリングは視覚的に起こる可能性が高いのです。
新生仔羊を用いた研究によると、熱発生反応のうち約60%が震えによるもので、残りの40%が褐色脂肪代謝によるものであることが示されている(Carstens 1994)。 生まれたばかりの子牛は、そこで確かに震え、そして体内で最も強力な熱産生器官である褐色脂肪を利用する! 興味深いことに、この子牛が持つ褐色脂肪は、出生時の体重の1-2%に過ぎないが、それでも熱発生能力の40%に相当する。 (面白い事実:信じられないかもしれないが、褐色脂肪は体重の1-2%とはいえ、実際の臓器である)。

熱生産を誘発するために、私たちは何ができるのか?

この子牛は、震えや褐色脂肪代謝によって体温を守る2つのメカニズムを持っているのだから、大丈夫なはずだろう?このまま立ち去って寝てもいいのだろうか?まあ、子牛が少なくとも立ち上がるようにした方がいいかもしれない。 Vermorelらが行った研究によると、生まれたばかりの子牛が10分間立つと熱産生が100%増加し、30分以上立つとさらに40%増加した。立っているだけで、筋肉の動きが活発になり、熱産生が誘発されるのである。

子牛を温めるために何か与えることはできますか?

もうひとつ、最も重要なことがある。初乳だ!初乳には免疫と組織成長をもたらす抗体と何百もの生理活性因子があるが、寒冷ストレスでは初乳脂肪が重要な役割を果たす。初乳脂肪はユニークな脂肪酸プロフィールを持ち、褐色脂肪細胞の基質となる。ある意味 褐色脂肪は、強力な熱を生み出す褐色脂肪のジェット燃料となる。 褐色脂肪細胞はコロストラムから脂肪酸を取り込み、燃焼の火花を散らして文字通り熱を生み出す。興味深いことに、コロストラムには他にも、より多くの褐色脂肪細胞を機能的な熱産生マシーンへと成熟させる生理活性因子が含まれています。すなわち、線維芽細胞成長因子(FGF)、インスリン様成長因子(IGF)、上皮成長因子(EGF)、血小板由来成長因子(PDGF)である。

従って、子牛が肉牛であろうと乳牛であろうと、体温が臨界下限温度(13.4℃/華氏 56 度)以下であれば、その子牛は肉牛になります、 子牛が初乳を飲むことは極めて重要です。 これで3つのことができる:

1.子牛を立ち上がらせるための豊富なエネルギーを供給する(活動によって熱産生が増加することを覚えておいてください)。

2.褐色脂肪細胞が熱を産生するのをジャンプスタートさせるために、ユニークなコロストラル脂肪を提供します。

3.初乳に含まれる大量の成長因子は、より多くの褐色脂肪細胞を勧誘する(ある意味、より多くのヒートマシンを作る)。

肉牛や乳牛の子牛に、初乳補充剤を熱発生のツールとして使用することは可能でしょうか?

代用初乳は、肉牛や乳牛が産生する母牛の初乳と同じなのでしょうか?ここからが難しいところです。残念ながら、すべての初乳が同じように作られているわけではありません。多くの初乳代替ミルクは、血液血清、乳清、乳清タンパク質濃縮物から作られており、初乳脂肪だけを主なエネルギー源としているわけではありません。脂肪源には、動物性脂肪、植物性油、ココナッツオイル、乳製品、パーム脂肪などがありますが、これらに限定されるものではありません。これらの脂肪は、コロストラル脂肪と同じ、あるいは独自の脂肪酸プロファイルを持っているわけではありません。したがって、脂肪もまた同じようにはつくられておらず、このことは褐色脂肪刺激という点で影響を及ぼすことが示されている。例えば、多価不飽和脂肪酸(オメガ3脂肪酸やオメガ6脂肪酸、魚油など)と飽和脂肪酸(獣脂、動物性脂肪、バターなど)の比較では、褐色脂肪に対するリクルート効果と刺激効果の両方があることが示されている(褐色脂肪細胞での熱産生を促進する重要な細胞成分(UCP1タンパク質含有量)に寄与するという意味で)。実際、Wilmsらの研究(2022年)では、コロストラル脂肪は全乳に比べて多価不飽和脂肪酸が多いことが示されている。オメガ3脂肪酸と呼ばれる多価不飽和脂肪酸は、全乳と比較して初乳の方が45%高かった(面白い事実:オメガ3脂肪酸の一種であるエイコサペンタエン酸(EPA)は、全乳と比較して初乳の方が73%高かった。)これには生理学的な理由があるようで、市販されている合成初乳代替食品に使用されている脂肪源の多くに疑問が持たれている。

コロストラムの代替品には何を求めるべきか?

コロストラムの代用品を使用する場合は、それが全牛のコロストラムとコロストラル脂肪から作られたものであることを確認してください!

コロストラム補充剤における初乳脂肪の重要性をさらに証明するために、低脂肪レベルのコロストラム補充剤に関する研究が行われた。コロストラム補充剤を利用する場合、初乳脂肪(純粋なウシ初乳由来)を含むだけでなく、十分な脂肪を含むことが重要である。

この研究では、脂肪分22%のコロストラム補充液と脂肪分5.7 %の脱脂コロストラムを比較した。どちらの補充液もIgG/抗体の量は同じで、違いは脂肪含有量だけであった。この試験は、震えを刺激せず、褐色脂肪代謝のみを刺激するようにデザインされた(最低温度13.4℃、平均温度21.4℃)。

結果は驚くべきものだった!脱脂初乳を与えた子牛は、生後 90 日間の呼吸器疾患が 50% 増加し、死亡率が 6% 増加した。また、直腸温が低く、立っている時間が短く、横になっている時間が長かった。 興味深いことに、脱脂初乳を与えた子牛は生後 4 ヶ月の体重増加が少なかった。 全脂肪初乳を給与した子牛は、90 日齢時の体重増加量が 6.6kg/14.6 ポンド増加し、 127 日齢時の体重増加量は 10kg/22 ポンド増加した。 これは、最初の 90 日間で 0.07kg/d(0.154 ポンド/日)、127 日齢で 0.1kg/d(0.22 ポンド/日)の平均日 増体重の差に相当する。体重増加への影響は計り知れず、経済的には、全脂肪と全脂肪のコロストラム補充液にお金をかけることができるということです。

保守的なアプローチとして、生後127日目まで飼養するのに1日1頭当たり$1.50かかり、目標体重が129kg/284ポンドだとします。

子牛が 40kg/88lbs で生まれ、体重が 0.71kg/d (1.56 ポンド/日)増加したとすると、129kg/284lbs に達するには、(129kg/284lbs-40kg/88lbs = 89kg/196lbs の総体重増加)(89kg/196lbs の総体重増加÷0.71kg/d(1.56 ポンド/日) = 125 日かかることになります。では、その 127 日間で子牛の体重が 0.81kg/d(1.79 ポンド/日)増加したとしましょう。

計算すると以下のようになる:(129kg/284ポンド-40kg/88ポンド=89kg/196ポンドの総体重増加)(89kg/196ポンドの総体重増加/.81kg/日(1.79ポンド/日)=109日で129kg/284ポンドに達する。その差は 125d-109d = 16 日となります。つまり、子牛の体重増加が 0.07kg/d(1.154 ポンド/日)多ければ、目標の 129kg/284 ポンドに 16 日早く到達することになります。子牛の飼料代が 1 日あたり $1.50 だとすれば、飼料を与える日数が減れば、$24.00 の節約になります。純粋な初乳脂肪を含む全脂肪初乳代用品に、$24.00 ドル多く費やす余裕がありますか?

褐色脂肪が新生児にとっていかに重要であるか、初乳が体温調節に果たす役割がいかに大きいかは、もうお分かりだろう。コロストラムの代用品が使えないわけではありませんが、全牛の初乳から作られ、脱脂されていたり、他の脂肪源が使われていないことを確認することが大切です。

 

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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コロストラム・カウンセル - 成功のためのテスト - 初乳給与後の子牛の免疫移行を測定することで、牛群の健康状態を知ることができます。

子牛は、生後数ヶ月間の免疫保護を初乳の摂取に頼るという点でユニークな種です。屈折率計は、個々の子牛の免疫移行を迅速かつ簡単に測定する正確な方法なのでしょうか?

初乳を十分に摂取することは、子牛の健康、生存率、成績、そして収益性を左右する 唯一重要な要素です。受動的移行とは、子牛が初乳を介して牝牛から免疫を獲得する現象を表すのに、 一般的に使われています。

子牛に初乳を飲ませました。子牛に十分な免疫力があるかどうか、どうすれば確認できますか?

多くの生産者は、子牛が受動的移行に失敗したかどうかを目視で判断する方法があるのかどうか、よく質問します。しかし、通常は血液サンプルを採取し、サンプルを遠心分離して血清を採取し、直接または間接的に IgG のレベルを測定する必要があります。

血清中のIgGを間接的に測定する方法は、血清総タンパク質(STP)を測定する光学屈折計またはデジタル屈折計を利用することです。この方法は、特定の日に血液を採取し、遠心分離し、血清を屈折計の上に置けば、その時点で結果がわかるため、子牛側の検査と考えられています。

血清総タンパク質は簡単に分析でき、酪農場で入手できるため、多くの酪農家は子牛の 受動的移行レベルを判定するためにこの検査に頼ってきました。この検査は長年行われており、有用なツールであるとみなされていますが、検査の限界のため、結果が誤って解釈されることがよくあります。

STPのデータを重視する前に、屈折計の仕組みと検査した血清の組成を理解することが重要です。信じられないかもしれないが、屈折計はもともとワイン、ビール、メープルシロップ産業で使用するために設計されたもので、水に含まれるショ糖や砂糖の量を測定するためのものである。屈折計自体は、光学式であれデジタル式であれ、光源とプリズムに依存している。
Brix屈折計は、初乳および血清中のIgG含量を間接的に測定するために、農場での使用が検証されている。

母牛の初乳を特別に給与された子牛では、血清総タンパク質が子牛の IgG レベルと高い相関性があることが証明されており、受動的移行障害(FTP)の同定にも使用されています。
しかし、血清総タンパク検査は、個々の子牛の受動的移行状態を判定するためのものではありません。

血清総タンパク検査は、個々の子牛の受動的移行状態に関する質問に答えるため のものではありません。むしろ、この検査の正しい利用法は、個体群レベ ルで、1 つの質問に答えることです:私の初乳管理プログラムはうまくいっているのか、それともうまくいっ ていないのか?Godden et al., 2008 はこのことを最も適切に説明しており、検査結 果はグループまたは牛群単位で解釈する必要があり、FPT を持つ子牛の相対的な 割合を正確に反映することができると述べています。

正確な検査方法と結果の意味は?

適切に実施するためには、少なくとも 12 頭の臨床的に正常な子牛から血清検体を採取する必要があります。
(生後 24 時間から 7 日齢までの間に(疥癬や呼吸器疾患がない)FTP を発症した子牛の割合。Godden ら(2008)はまた、FTP を有する子牛の割合を決定するための 2 つのカッ トオフ法について言及している。1 つの目標は、検査した子牛のうち 80% 以上が 5.5g/dL を満たすこと、もう 1 つの目標は、子牛のうち 90% 以上がカットオフ値 5.0g/dL を超えることである。

FPT を発症した子牛が不釣り合いなほど多い場合は、初乳管理プログラ ムに問題がないか調査することを推奨します。

さらに、血清中の真のIgG濃度を決定するためのゴールドスタンダード法である放射状免疫拡散法(RID)を利用することも考えられる。

「...このテストの正しい利用法は、集団レベルで、一つの質問に答えることです:私の初乳管理プログラムはうまくいっているのか、それともうまくいっていないのか?"

初乳の代用品を給与した後、屈折率計を使って子牛を検査できますか?

初乳代用品を給与している場合、集団レベルであっても、受動的移行状態を判断 するために血清総タンパク検査を利用すべきではない。Lopez ら(2021)が最近実施した研究では、母牛に初乳を給与した子牛と、初乳をベース とした代用初乳を給与した子牛の血清総タンパク質の使用精度を調べました。初乳ベースの初乳代用品を給与した子牛を考慮した場合、血清 IgG は不正確であるか、相関性が低かった。

そのため、初乳代用品を給与した子牛の 受動レベルの状態をモニタリングしたり、判定したりする際に、血清総タンパク 質を利用することは推奨されません。代わりに放射状免疫拡散試験を行うことを推奨します。

血清総蛋白値に影響を及ぼし、屈折計による検査結果を変化させる可能性のある他の因子はどれか?

また、血清の組成と、血清中の検査項目の限界を考慮することも重要である。血清総タンパク質に基づいて受動的移行の状態を理解しようとする場合、以下の仮定を忘れてはならない:

  1. 初乳の固形分には、約50%のタンパク質が含まれている(その半分までがIgG1)。
  2. 初乳のタンパク質はすべて非選択的に血中に吸収される(IgGだけではない)。
  3. 初乳を大量に吸乳している子牛は、血清総タンパク濃度を測定することで 判別することができ、総タンパク濃度が高い子牛は IgG1 濃度も高い。これはある程度正しいのですが、血清総タンパク質は初乳摂取後に測定されることも忘れてはいけません。

したがって、血清総タンパク質も以下の影響を受ける:

  1. 血清タンパク質のプリサックル値
  2. 吸収されたタンパク質の量(1で述べた通り)。初乳の吸収量が多いほど、タンパク質の吸収量も多い。
  3. 初乳中のIgG濃度が高いほど、血清蛋白質も高くなる。
  4. 採血のタイミング。

コロストラムを摂取した子牛は、コロストラムを摂取していない子牛よりも総タンパク質が 低い場合がある(Tennant et al AJVR 1969 30: 345)。これは、アルブミン濃度の差に よるもので、生後 1 日の子牛では 1.9 ~ 3.4 g/100 ml である(Schultz et al 1971, 35:93)。初乳を摂取する前の子牛の血清総タンパク質が高いのは、このためである。

下図に、血清中に含まれるその他のタンパク質の概要を示します。初乳の固形分総量を測定するのと同様に、子牛血清中の総タンパク質を測定する場合、血清タンパク質が高ければ血清IgGも高く、逆もまた同様であると仮定します。しかし、IgG はひとつの成分に過ぎず(主成分ではない)、他の成分の変化も血清総タンパク質量に影響します。言い換えれば、例えば子牛がアルブミンレベルの高い状態で生まれた場合、血清総タンパク質は高く表示され、IgGはタンパク質レベルの高さを示さない可能性があります。

まとめると、子牛の免疫状態を測定することは重要ですが、最も実用的 で正確な方法は、牛群レベルで測定することです。一頭の子牛の結果に固執するのではなく、健康な子牛がいるかどうかを自問 してみましょう。牛群レベルで免疫の移行を見ることで、初乳プログラムと子牛の健康状態を知ることができます。

血清総蛋白質検査

DO'S(ドーズ 禁止事項
少なくとも12頭の子牛の群れの状態を評価する。
カテゴリーレベルを理解する
12~36時間の間に検体を採取する
母体初乳プログラムの一般的な評価を得るために使用する。
× 個々の子牛の評価
× 48 時間後または病気の子牛に検体を採取する。
× 子牛の保険料支払いにSTPを使用
× コロストラム補充プログラムの成功をテストするために使用する。

 

マイク・ナガースケDVM

SCCLリサーチ・ディレクター
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コロストラム・カウンセル - 生まれたばかりの子羊や子供に乾燥初乳を与えることは、非常に効果的で便利な代替方法である。

生まれたばかりの子羊や子供は、唯一の栄養源として初乳を必要とします。牝羊が十分な高品質の初乳を与えられない場合、生産者は非常に効果的で便利な代替手段を手に入れることができます。

 

初乳とは何ですか?

初乳は雌牛/雌牛の乳腺から分泌される最初の分泌物であり、新生児にとって重要かつ最も重要な栄養源である。このミルクは栄養価が高いだけでなく、発育を助け、感染症から身を守る抗体源でもあるため、子孫の生存と健康にとって重要な成分です。初乳はエネルギー源であるため、新生児が生き延びるために体温を維持するのに役立つ。初乳はまた、生理活性因子、細胞、ホルモンなどの多様な成分により、子羊の体や臓器の成長と発育、将来の母乳生産に貢献します。出生直後から十分な量の高品質な初乳を与えることは、短期的にも長期的にも新生児を保護します。理想的には、新生児には出生後できるだけ早く(30分以内)初乳を与えるべきであり、この最初の摂取が出生後2時間を超えないように注意することである。

反芻動物の胎盤の種類により、妊娠中の母体から胎児への受動免疫グロブリンの移行は障害される。したがって、初乳が初期獲得免疫の唯一の供給源となる。従って、新生仔/仔羊の生存率は、出生後数時間の初乳の有無に左右される。

初乳はいつ、どのくらい必要ですか?

仔牛や子羊の罹患率や死亡率は世界的な課題であり、農場の福祉や生産性に影響する。十分な量の初乳を与えることは、新生児に危害を及ぼす感染症による損失を減らす鍵である。ほとんどの集約型酪農場では、子羊や子供は出生直後に母羊から引き離され、人工飼育ユニットに移されます。良質で十分な量の初乳をできるだけ早く与えることは、子羊の健康にとって不可欠である。

子羊と子供は、出生後できるだけ早く、少なくとも 50ml/kg の良質な初乳 (>25% Brix)を与えなければならない。この最初の給与は、出生後 2 時間以内でなければならない。24 時間以内に、新生仔羊/子供は初乳 200ml/kg 体重相当(AHDB)または IgG 30g 以上を摂取しなければならない。したがって、体重 3kg の新生児は、理想的には生後 1 日目に少なくとも 600ml の初乳を飲まなければならない。この量は2~3回の食事に分けることができます。しかし、この量を摂取できない場合、十分な受動免疫移行を確保するための推奨摂取量は、新生児体重の10~15%である。つまり、体重3kgの子羊は、生後1日目に少なくとも450mlを2~3回に分けて摂取する必要がある。

初乳の品質が悪かったり、十分な量がなかったり、あるいは初乳を迅速に供給するための農場スタッフが不足していたりするために、初乳に関する問題が生じることがある。このような問題はすべて、新生児の健康を害し、感染症や生後数ヶ月の発育不良にさらす可能性がある。そのため、新生児が十分な量の高品質な初乳を確実に摂取できるよう、乾燥初乳の投与プロトコルが開発されました。

乾燥牛初乳は使えますか?

市販のウシ乾燥初乳は、すでにいくつかの飼育施設で使用されている。ウシの初乳とヒツジ・ヤギの初乳の両方に由来する IgG 抗体の吸収効率が高いことが、研 究によって明らかになっている。つまり、牛の初乳を新生児や子羊に与えれば、優れた結果が得られるということです。

全牛初乳の代用品を使用することで、離乳前の罹患率や死亡率が減少し、抗生物質の使用量も減少します。その結果、1日の体重増加率が向上し、子羊の販売頭数が増加します。さらに、コロストラムは下痢を防ぎ、全体的な健康と体重増加を改善することが知られています。

 

 

ジュリアナ・メルグ・レアン(DVM, MSc.

SCCL獣医テクニカルスペシャリスト
[email protected]

 

ハイム・レイボビッチ博士

小型反芻動物生産システム・コンサルタント
[email protected]

 

ジョアナ・パルハレス・カンポリーナ、DVM、MSC、DsC。

獣医師/研究獣医師
[email protected]

 

コロストラム・カウンセル - 新生子牛にペースト状製品は有効な近道か?

市場には、子牛が直面するさまざまな問題を手っ取り早く解決するための、ペースト状の製品が数多く出回っています。本当に効果があるのだろうか?もし効果がないのなら、代わりに何を与えたらいいのだろうか?

イントロ

サスカトゥーン・コロストラム・カンパニーの獣医技術サービス部長として、私はよく、市販されている様々なチューブのペーストについて、また、それらが初乳の補充や補給と比較してどうなのかについて、意見を聞かれることがあります。このような話をするためには、生産者が何を目標とし、どのような方法でペーストを使用しようとしているのかを理解することが重要です。生産者が求めているのは、エネルギー源となるペーストなのか、あるいは直接給与される微生物を含むペーストなのか。それとも、初乳(免疫グロブリン)のサプリメントが欲しいのでしょうか?これらの目標を個別に見ていくと、これらのチューブは通常、期待される結果を出すには不十分であることがわかります。

エネルギー

市販されているチューブのほとんどは、タンパク質(0~3.5g CP)と脂肪(0~4g CF)をごくわずかしか含んでいない。これらのチューブに含まれる脂肪は、コーン油、獣脂などの代替脂肪であることが多く、コロストラル脂肪よりも生物学的利用能の低い脂肪である。コロストラル脂肪が含まれているものでも、含有量が少ないため、ほとんど効果がない。対照的に、初乳全体を見ると、子牛に与える量にもよりますが、168~672gの粗タンパク質と70~280gの粗脂肪が初乳脂肪として含まれています。

直送微生物

子牛の消化管内の常在腸内細菌叢の数は、通常、異なる種で数千に上ります。ほとんどの直接給与微生物(DFM)ペーストは、1~3種の主要な腸内細菌を供給します。コロストラムには、すべての菌株をサポートする40種類以上の天然プレバイオティクスが含まれています。

初乳サプリメント+免疫

子牛が成長するためには、生後数時間で300gのIgGを摂取する必要がある。これらのチューブ製品の免疫グロブリン濃度に関しては、インパクトのある量のIgGを供給するには不十分です。ほとんどの「コロストラムサプリメント」チューブは、3.5~13gのIgGを供給します。繰り返しになりますが、コロストラムを比較すると、投与量にもよりますが、50~200gのIgG抗体が摂取できます。結論として、牛の初乳は子牛に与えられる免疫グロブリンと栄養素の最良の供給源です。生産者が子牛の健康増進のための選択肢を検討する際、初乳管理は最重要課題であるべきです。

 

 

トラビス・ホワイトDVM博士

SCCL獣医技術サービス部長
[email protected]

コロストラム・カウンセル - コロストラムを食道チューブから哺乳瓶で与えるか?

初乳を与える場合、生産者には食道チューブフィーダーと乳首ボトルの2つの方法がある。この2つの方法のどちらを使うかは、時間、設備、個人的な好みが影響します。今月のコロストラムカウンセルは、新生子牛への初乳給与について、食道チューブ給与とボトル給与の効果について説明します。

 

コロストラム・カウンセル
食道チューブによる初乳哺乳と哺乳瓶による初乳哺乳

生まれて間もない子牛に、生後数時間以内に良質な初乳を与えることは、子牛の健康と成 功に不可欠です。初乳を子牛に与える方法には、食道チューブフィーダーと乳首ボトルの 2 種類があります。チューブフィーダーは、大量の初乳を数分で与えることができるため、一般的 に時間効率の良い方法と考えられています。対照的に、乳首ボトルからの初乳給与は時間がかかるが、子牛が哺乳瓶から初乳を吸うのを模倣しているため、「より自然」と考えられている。

チューブフィーダーは時間効率の良い方法ですが、チューブで初乳を給与すると、初乳 がルーメンに入り、腸への初乳の供給が遅れるという懸念があります。特に、チューブ給餌の子牛の血中 IgG 濃度は、乳首 哺乳瓶で給餌した子牛よりも低いことから、チューブ給餌の場合、初乳がルーメンに入 る可能性を示唆する先行研究が 2 件ある(Kaske ら、2005;Godden ら、2009)。しかし、これらの研究では「第四胃空洞化率(abomasal emptying rate)」を実際には測定していない。さらに、初乳の給与方法によって影響を受ける可能性のある因子は豊富にあるが、これまでの研究では、給与方法が IgG にどのような影響を与えるかにのみ焦点が当てられていた。

アルバータ大学の研究者たちは、このような大きな知識のギャップを埋めるために、食道チューブで初乳を与えた場合、腹腔排出率、血中IgG、グルコース、インスリン、腸内ホルモン(グルカゴン様ペプチド-1(GLP-1)およびGLP-2)濃度が、乳首哺乳瓶で初乳を与えた子牛と比較して影響を受けるかどうかを調べようとした。

方法

この研究(Desjardins-Morrissette et al., 2018)を実施するため、20頭のホルスタイン種雄牛の子牛に、3Lの初乳を乳首付きボトルから与えるか(BOTTLE calves)、3Lの初乳を食道チューブから与えた(TUBE calves)。給与方法に関わらず、両群とも生後 2 時間に同じ初乳(Headstart, SCCL, IgG 総量 200g)を給与した。初乳給与後、子牛には生後 12 時間に 3L の低温殺菌全乳を乳首哺乳瓶で与え、以後 12 時間ごとに与えた。初乳給与後、頻回に採血を行い、腹腔空洞化率、血中 IgG、グルコース、インスリン、GLP-1 および GLP-2 濃度を推定するため、生後 1 時間に頸静脈カテーテルを挿入した。

IgGと胃内容排出

まとめると、IgG 濃度と腹腔排出率には、チューブ給与の子牛とボトル給与の子牛で 差は見られなかった(表 1)。以前の研究(Godden ら、2009 年)では、初乳 1.5L を経管給与した場合にのみ IgG 濃度の低下が認められ、初乳 3L を経管給与した場合は認められなかった。離乳前の子牛のルーメンには最大 400ml の液体が貯留すると推定されており(Chapman et al.基本的に、少量(例えば 1.5L)の初乳をチューブで給与した場合、ルーメンに残 る食事の割合(~26%)が多くなり、大量(例えば 3L)を給与した場合は、ルーメンに残 る食事の割合(~13%)が少なくなり、IgG 濃度に影響を与えない可能性が高い。

この試験では、高品質の初乳が給与されたことも重要である。特に、各子牛は 3L の給餌で 200g の IgG を摂取しており、これは推奨最低量 (100g)を大きく上回っている。質の異なる初乳を給与したことが、今回の結果に影響したかどうかは不明である。ともあれ、著者らは、十分な量の良質な初乳を給与し、チュービングを 適切に行えば、経管栄養でも哺乳瓶栄養でも、子牛に初乳を与えることで十分な受動 的免疫伝達が行われるはずであることを示唆しています。

グルコースとインスリンの濃度

子牛に初乳を経管栄養すると、哺乳瓶で初乳を与えた子牛と比較して、グルコース とインスリンの曲線下面積(AUC)が増加した(表 1)。すべての子牛に同じ初乳を与えたため、乳糖(~2.7%、Godden ら、2009)とグルコース の量も同じであった。従って、この差がグルコースの給与量の違いによるものでないとすれば、経管栄養の子牛が哺乳瓶栄養の子牛(17.6 分)よりも短時間(5.2 分)で初乳給与食を摂取したことによるものと考えられる(表 1)。牛では、30% のグルコースが小腸で利用され、残りの 70% が消化され て血中に現れることが証明されている(Richards ら、1999)。TUBE の子牛は初乳を短時間で摂取したため、初乳が小腸に入る時間が早まった。そのため、血液中に入るブドウ糖の量が増え、小腸で利用される量が減ったと 考えられる。その結果、TUBE の子牛はグルコース濃度とインスリン濃度が高くなった。

興味深いことに、TUBE の子牛は BOTTLE の子牛(2.47 L)に比べ、初乳の間、哺乳瓶でミルクを飲む量が多かった(2.96 L)(表 1)。著者らは、おそらく TUBE の子牛は初乳を与えられた後、小腸で使用されるグルコースが少なかったため、初乳時に哺乳瓶でミルクをより多く消費したのではないかと推測している。

グルカゴン様ペプチド1および2の濃度

この試験以前に、新生子牛の GLP-1 と GLP-2 の血中濃度が報告されたことはなく、ましてや初乳給与に対す る反応が報告されたことはない。GLP-1 と GLP-2 には治療効果は認められなかったが、コロストラム食後には有 意な時間効果が認められた(図 1)。GLP-2 は腸の発育を刺激することで知られており(Taylor-Edwards ら、2011)、GLP-1 は子牛の血中インスリン濃度を上昇させ、その結果、エネ ルギー消費のためにグルコースを取り込むことが示されている(Fukumori ら、2012a)。これらのホルモンの小腸からの分泌は、脂質や炭水化物などの栄養素によって刺激され るため(Burrin ら、2001)、初乳を与えることで未熟な新生仔牛の腸内で分泌が開始される。したがって、治療効果は観察されなかったが、この研究から、初乳はこれらの腸 ペプチドホルモンの作用を通じて子牛の腸の発達に有益な影響を与える可能性が示唆された。

メッセージ

子牛に 3L の初乳を食道チューブフィーダーで与えても、乳首付き哺乳瓶で与えても、 腹腔排出、血中 IgG、GLP-1、GLP-2 濃度に差は認められなかった。しかし、経管栄養の子牛は、哺乳瓶栄養の子牛と比較して、血中グルコース濃度が高くなり、初乳の消費量が増加した。これらの結果は、経管栄養の子牛は小腸のエネルギー基質とし て利用できるグルコースが少ないために起こったと考えられるが、さらなる研究が必 要である。

アマンダ・フィッシャー、MSc.

SCCL、アルバータ大学リサーチ・アシスタント
[email protected]

コー・オーサー
マライア・デジャルダン=モリセット(MSc.

 

参考文献
Desjardins-Morrissette, M., J.K. van Niekerk, D. Haines, T. Sugino, M. Oba, and M.A. Steele.2018.初乳の経管栄養と哺乳瓶栄養が新生子牛の IgG 吸収、第四胃排出、血漿中ホルモン濃度に及ぼす影響。J. Dairy Sci. 101(5):4168-4179.
Burrin, D.G., Petersen, Y., Stoll, B., Sanglld, P. 2001.グルカゴン様ペプチド2:栄養応答性腸管成長因子。J. Nutr.
Chapman, H.W., Butler, D.G., Newell, M. 1986.子牛への食道哺乳による水分投与経路。Can.J. Vet.50(1):84-87.
福森亮介、三田貴志、杉野貴志、帯津隆彦、谷口和彦、2012.離乳前後の子牛におけるグルカゴン様ペプチド-1(7-36)アミドの血漿中濃度と作用.Domest.Anim.Endocrinol.43: 299-306.
Kaske, M., Werner, A., Schberth, H.J., Rehage, J., Kehler, W. 2005.子牛の初乳管理:ドレンチングと哺乳瓶給与の効果。J. Anim.Physiol.Anim. Physiol.Nutr. 89(3-6):151-157.
Godden, S.M., Haines, D.M., Konkol, K., Peterson, J. 2009.子牛における免疫グロブリンの受動的移行を改善する。授乳方法と初乳給与量の相互作用。J. Dairy Sci. 92 (4):1758-1764.
Richards, C. J. 1999.肉牛の炭水化物同化および代謝における小腸タンパク質の影響。Ph.D. Diss.Univ. Kentucky.
Taylor-Edwards, C.C., Burrin, D.G., Holst, J.J., Mcleod, K.R., Harmon, D.L. 2011.グルカゴン様ペプチド-2(GLP-2)は、反芻期の子牛の小腸血流と粘膜成長を増加させる。J. Dairy Sci. 94: 888-898.

 

コロストラム・カウンセル - 動物用生物製剤とは何か?

SCCLのほとんどの製品は「動物用生物製剤」に指定されています。この重要な分類により、当社の製品は、コロストラム製品に適用される世界的に最も高い規制基準を満たしていることが保証されます。

動物用生物学的製剤とは?

動物用生物製剤は、一般的に「動物の感染症の予防、治療、診断に使用されるワクチン、抗体製剤、体外診断用検査キットなどの動物用医薬品」と定義される。動物用生物製剤は、異なる作用機序を持つ動物用医薬品とは異なり、感染症に対する免疫学的反応を特異的に刺激または関与させる。しかし、SCCLはカナダで製造しているため、カナダ食品検査局(CFIA)、カナダ動物用医薬品センター(CCVB)の規制を受けています。牛の初乳は、カナダでは動物用生物製剤としてのみ販売されており、SCCLがカナダ国内で販売するか、子牛、子羊、ヤギの製品を世界中に輸出するかに関わらず、動物用生物製剤に関する規制と基準を遵守しなければなりません。動物用生物製剤として、牛初乳は抗体製品(具体的には、牛免疫グロブリンGまたは牛IgG)に分類され、新生子牛、子羊または山羊の「受動的移行障害(FPT)の予防を助ける」という効能があります。

資格はどのように取得するのですか?

動物用生物製剤を製造する施設およびその施設で製造される各製品は、CFIA-CCVBによるライセンスが必要です。施設または事業所ライセンスおよび製品ライセンスは、初回承認後、毎年更新する必要がある。認可を得るには、製品をカナダ国内で販売または流通させる前、あるいは世界中に輸出する前に、各製品が純度、効力、安全性、対象種における有効性、およびラベルの指示に従う要件を満たしていることを証明する包括的な申請書を提出し、CFIA-CCVBによる審査・承認を受けなければなりません。製造施設または事業所は、最終製品の試験、包装、保管または受託製造に使用される契約施設を含め、包括的な立入検査を受けなければなりません。この施設事前許可検査は、CFIA-CCVBが実施し、施設および製品の両ライセンスを維持するために、許可を受けた施設およびその契約施設に対して、物理的および管理的な検査が継続的に義務付けられています。現在、SCCLは最低12ヶ月ごとにCFIA-CCVBの検査を受けています。

動物用生物学的製剤は、どのような基準を満たす必要があるのでしょうか?

動物用生物製剤としてのコロストラムは、規制当局により承認された試験により、特定の仕様または制限を持つ定義された微生物から純粋であること、またはフリーであること、効力があり、有効成分またはウシIgGが機能的であり、有効性が証明された指示された量が存在すること、対象種に使用しても安全であり、不当な反応を引き起こしてはならないこと、そして、指示された通りに使用された場合、有効であり、承認された主張により期待され記載された保護または利益を提供することを保証するための要件を満たさなければなりません。動物用生物学的製剤の純度、効力、安全性および有効性は、規制当局が審査し、定められた基準または要件に照らして測定された確かな研究データ、試験結果および観察結果を提出することにより、許可前に規制当局に証明されなければならない。

 

マニュエル・F・チャモロ、DVM、MS、PhD、DACVIM
カンザス州立大学獣医学部畜産・フィールドサービス助教授、SCCLテクニカル獣医コンサルタント

コロストラム・カウンセル - 離乳前の子牛の抗生物質治療を減らす代替としてのコロストラム代替製品の使用

農業における抗生物質の使用は、生産者にとっては新たなコストとなり、消費者 にとっては懸念材料となっている。初乳代用品を与えることで、離乳前の子牛の抗生物質治療の必要性を減らすことができるかもしれません。

抗生物質耐性菌の出現に対する現代社会の関心の高まりから、規制機関は感染症の治療や予防のために、食用動物に使用できる抗生物質の数を最小限に制限するようになった。牛肉や酪農経営における抗菌剤の不当な使用は、耐性微生物がヒトに感染するリスクを増大させ、ヒトの健康に悪影響を及ぼす可能性がある [Silbergeld et al.]肥育場や酪農牧場に到着した子牛の疾病を予防するために、予防的・メ タフィラキシー的に抗生物質を投与することは珍しいことではありません。抗生物質の過剰使用が見られる一方で、ヒトや獣医療における古くからの感染症や新しい感染症を治療するための新しい抗菌薬の発見や開発は、ここ数年で減少しています。2006年から2010年にかけて、抗生物質不足は283%増加したと推定されている[Stanton 2013; Borchardt and Rolston 2013]。

食用動物の治療に使用できる抗生物質には限りがあり、同時に、肥育場や乳牛子牛の飼育場など、一部の畜産経営で観察される高い罹患率と死亡率を克服するために、抗菌ワクチン、免疫調節剤、抗菌ペプチド(AMPs)など、抗生物質の代替品の開発が提案されている [Seal et al.]母体初乳は免疫グロブリン(IgG)を通して新生仔牛に特異的な免疫を与え、生後数週間の間、感染性微生物から効果的に保護します。IgG に加え、母牛の初乳には免疫調節因子(サイトカイン)、抗菌ペプチド(ラクト フェリン)、成長因子(EGF、IGF-1)、ビタミン類が高濃度に含まれており、これらの因子は子牛の免疫 応答を高め、抗菌機能を発揮する[Hagiwara et al.]子牛の腸管が IgG を吸収する能力は生後 6 時間以降に徐々に低下するため、新生子牛の初乳摂取は出生直後に行うべきである。生後 24 時間に IgG の受動的移行が十分に行われた子牛は、IgG の 受動的移行がうまくいかなかった(FPT)子牛と比較して、罹患率および死亡率が低 い [Berge et al.しかし、免疫グロブリン(IgG、IgA、IgM)、免疫調節因子、ビタミ ン、成長因子、抗菌性分子を含む母体初乳の有益性は、子牛の飼料に母体初乳を継続的に 投与することで、離乳前の期間に延長できる可能性がある。生後 24 時間以降の子牛では IgG の吸収は起こらないが、初乳に含まれる免疫グロブリ ンやその他の免疫因子の作用により、消化管に局所的な免疫ができ、腸管ウイルスや細菌による 感染を予防できる可能性があることが研究で証明されている [Snodgrass ら 1982]。ある研究では、部分的または完全な FPT を発症した子牛に、IgG を 10g 含んだ乾燥初乳-初乳代用品 70g を生後 1 日から 14 日まで 1 日 2 回、代用乳飼料に混ぜて投与したところ、初乳代用品を投与しなかった FPT を発症した子牛の対照群と比較して、下痢の日数と抗生物質投与回数が有意に減少したことが示された [Berge et al.]

SCCL で最近行われた試験では、子牛牧場でホルスタイン種の子牛に 1 日目から 14 日目まで 1 日 2 回、乾燥コロストラムとコロストラムの混合物を 150g 投与し、疾病(下痢と肺炎)の発生率および抗生物質の総投与回数を、飼料にコロストラムの補充物を 投与しなかった子牛の対照群と比較しました。本試験で使用した全ての子牛は、試験開始時に IgG の受動移行が十分であった (血清中の IgG が 10 g/L 以上)。初乳代用品を給与した子牛の発病率は全体的に 40% 減少した。さらに、初乳代用品を給与した子牛の群では、抗生物質の投与回数が 4 回減少した(Chamorro and Haines 2015、未発表データ)。IgG、免疫因子、ビタミン、ラクトフェリンなどの抗菌ペプチドなど、乾燥初乳-初乳補 充飼料に含まれる成分が、初乳の補給を受けた子牛の局所および全身免疫を高める役割を果た している可能性がある。これらの研究結果から、受動的移行状態に関係なく、生後 2 週間の乳牛子牛に初乳を 補給することで、疾病の発症を抑え、離乳前の抗生物質の予防的・治療的使用を最 小限に抑えられることが示唆される。

 

Manuel F. Chamorro, DVM, MS, PhD, DACVIM .

SCCLテクニカルサービス・臨床研究ディレクター

 

参考文献

- Silbergeld EK, Graham J, Price LB.食用動物の工業生産、抗菌剤耐性、および人間の健康。Annu Rev Public Health.2008;29:151-169.

- スタントンTB.抗生物質代替研究の必要性。Trends Microbiol.2013;21(3):111-113

- Borchardt RA, Rolston KV.抗生物質の不足:増大する問題に直面した際の効果的な代替手段。JAAPA.2013; 26(2):13-18.

- Seal BS, Lillehoj HS, Donovan DM, Gay CG.抗生物質の代替品:畜産における課題と解決策に関するシンポジウム。以下のPubMed Commonsのコメントを参照Anim Health Res Rev. 2013; 14(1):78-87

- 萩原和彦、片岡慎一郎、山中秀樹、桐澤玲子、岩井秀樹。ウシ初乳中のサイトカイン検出。Vet Immunol Immunopathol.2000; 76(3-4):183-190.

- 山中秀樹、萩原和彦、桐澤玲子、岩井秀樹。ウシ初乳中の炎症性サイトカインは、IL-2およびCD25発現を介して新生子牛末梢血単核球の分裂促進反応を増強する。Microbiol Immunol.2003; 47(6):461-468.

- Berge AC、Lindeque P、Moore DA、Sischo WM.予防的および治療的抗生物質の使用が、離乳前の子牛の健康と成績に及ぼす影響 を評価する臨床試験。J Dairy Sci. 2005; 88(6):2166-2177.

- Snodgrass、DR、Stewart J、Taylor J、Krautil FL、Smith ML。ロタウイルスを接種した牛の初乳を与えることで、乳牛子牛の下痢が減少した。Res Vet Sci. 1982; 32(1):70-73.

- Berge AC、Besser TE、Moore DA、Sischo WM.離乳前の子牛の健康と成績に及ぼす、初乳 14 日間の初乳経口補給の効果の評価。J Dairy Sci. 2009; 92(1):286-295.

コロストラム・カウンセル - 健康な子牛を確保するための農場での実践的技術ガイド

農場での子牛管理に関して言えば、生産者の主な目標は、健康で生産性の高い子牛を産み、やがて生産性の高い牛にすることです。この目標を達成するためには、子牛がその潜在能力を最大限に発揮できるよう、牧場内で特定の技術を使用する必要があります。本号のコロストラム・カウンセルでは、生産者がブリックス屈折率計を用いて初乳の品質を評価する方法と、若い子牛の血液サンプリングの方法を学ぶことができます。

 

コロストラム・カウンセル健康な子牛を産むための農場技術の実践ガイド

生後 1 日目に子牛に十分な量の IgG を与えないと、受動的移行がうまくいかず、子牛の健康 が損なわれることがわかっています。しかし、初乳の品質を実際に評価している酪農家はごく一部で、そのほとん どが目視検査のみで初乳の品質を評価しています。初乳には少なくとも 1 リットルあたり 50g の IgG が含まれていることが必須ですが、実際には 16 ~ 29% のサンプルにはこれ以下の IgG しか含まれていないことが報告されています(Bartier ら、2015; Quigley ら、2013; Morrill ら、2012)。では、受動免疫を確実にするために、農場で時間とコスト効率の良い方法でIgG濃度を測定するにはどうすればよいのでしょうか?

ブリックス屈折計の使用

Brix屈折計は、初乳の品質を測定するための効率的で使い勝手の良い方法です。屈折計は、溶液中のスクロース(糖)の屈折率を測定するもので、このため歴史的にワイン、フルーツジュース、砂糖産業で使用されてきました。初乳に関しては、Brix屈折計は全固形分量を測定することで、間接的にIgG濃度を測定する。最近の研究では、初乳の品質が適切であることを示すカットオフポイントとして、Brix値23%を用いるべきであると示唆されている(Bartier et al.)光学式Brix屈折計はかなり安価で($100-$200 CAD)、デジタルBrix屈折計と同程度の精度がありますが、コスト効率は劣ります($400+)。

光学式ブリックス屈折計を使用する:

1.サンプルカバーを開け、初乳をサンプルエリアに数滴垂らす。終わったらカバーを閉じる。

2.屈折計のスコープを覗きながら、光源に対して90度の角度を保つ。

3.Brix値は、明るい部分と暗い部分の間で読み取ることができる。

4.終了後、試料全体を拭き取り、別の試料を検査する前にその部分を清掃する。

画像1.
針、針移動、血清バキュテナーチューブ。

 

画像2.
剃毛していないふくらはぎの頸静脈の位置。

 

画像3.
剃毛したふくらはぎの頸静脈の位置。

 

子牛の採血

初乳に含まれる IgG を検査する方法がわかったので、子牛に受動的移行が実 際に起こったかどうかを確認する方法も学ぶことができます。採血は、IgGの状態を評価するために生後1週間に行うことができますが、農場の病気の有無をモニターするためにも、いつでも行うことができるため、持っておくと便利な技術です。子牛からの採血は簡単に習得できる技術で、あなた自身や子牛にストレスを与えるものではありません。

牛の採血は尾静脈から行うのが一般的ですが、子牛では尾静脈は細す ぎるため、頸静脈から行います。頸静脈はあまり大きくないため、18 または 20 ゲージ、1 インチの採血針を使用します。検体を採取する最も一般的な方法は、血清真空チューブを使用することであるため、専用のホルダーも必要である(画像1)。針、ホルダー、チューブは地元の動物用医薬品店で入手できるはずですし、オンラインで注文することもできます。

必要なものがすべて揃ったら、以下の手順で子牛の採血を行います:

  1. 子牛の後部をコーナーに後退させます。こうすることで、サンプル採取中に子牛が動きすぎるのを防ぐことができます。ふくらはぎの上に寄りかかり、片手をふくらはぎの首の付け根に置き、もう片方の腕でふくらはぎの首を大腿上部に伸ばします(画像4)。
  2. 頸静脈を見つけるには、左手をふくらはぎの首の下にしっかりと当て、静脈を拡大します(画像2)。頸静脈が頸静脈溝に「飛び出す」のを感じるはずです。頸静脈の採取を初めて試みる場合は、頸静脈の位置に確信が持てるまで、ふくらはぎの首の頸動脈溝部分を削ることもできます(画像3)。
  3. 静脈の位置を確認したら、針で静脈を穿刺します。針を静脈にほぼ平行に刺す必要があります(画像6)。針を刺したら、真空チューブをホルダーに取り付けます。血液はチューブに容易に流れ込むはずです。血液が流れにくい場合は、血液が流れ始めるまで針を前後に軽く動かして調節することができます。真空チューブを取り付けたまま針が静脈から完全に抜けてしまうと、真空がダメになってしまうので、2回目からは新しいチューブを使う必要がある。子牛の頸静脈を刺すのは、それぞれ最大3回までとする。子牛を静止させるのが難しい場合は、子牛を拘束する補助を頼んでください。脱水や病気の子牛は静脈が細いため、血流を確保するために針を静脈に刺す回数が少なくて済む場合があります。
  4. 十分なサンプルが採取されるまで、血液をチューブに流します。採血が終わったら、静脈から針をそっと抜き、挿入部位を5~10秒間圧迫する。こうすることで、頸静脈上に血腫(血液が溜まること)ができるのを防ぐことができます。
  5. 終了後、針を適切に廃棄し、血液チューブを保管する。ふくらはぎごとに新しい針を使用するようにしてください。

血液サンプルを採取したら、IgG含量の分析用にサンプルを送るか、自分で分析することができます。血液中の IgG 濃度を推定するために必要なものは、初乳中の IgG 濃度を推定するために既にお持ちかもしれない Brix 屈折計と、血液を紡糸するための遠心分離機($100-$400 CAD)だけです。子牛から血液を採取した後、血清真空チューブを室温で 1 ~ 3 時間保管し、血液を凝固させます。血液凝固後、血液サンプルを低速(例:3000 x g)で 20 分間遠心する。IgG含量を推定するには、血清上清(透明な層)を数滴ピペットでサンプルカバーに滴下し、Brix値を読み取ります。Brixパーセンテージは血清IgG濃度と高い相関性(93%)があり、受動的移入を成功させるために使用すべきカットオフポイントは8.4%である(Deelenら、2014)。

テイク・ホーム・メッセージ

子牛の血液サンプルの採取方法を学び、Brix屈折率計を使って血液と初乳中のIgG含量を推定することは、簡単に習得できる技術です。牧場でこれらの技術を使用することで、最良の初乳を給与することができ、子牛の受動授精を成功させ、牧場の病気のリスクを減らすことができます。

 

 

アマンダ・フィッシャー、MSc.

SCCL、アルバータ大学リサーチ・アシスタント
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参考文献
Bartier, A.L., M.C. Windeyer, and L. Doepel.2015.初乳品質測定のための農場内ツールの評価。J. Dairy Sci. 98:1878-1884.
Deelen, S.M., T.L. Ollivett, D.M. Haines, and K.E. Leslie.2014.新生仔牛の血清免疫グロブリン G 濃度を推定するための Brix 屈折率計の評価。J. Dairy Sci. 97(6):3838-3844.
モリル、K.M.、E.コンラッド。A.ラゴ、J.キャンベル、J.クイグリー、H.タイラー。2012.米国の酪農場における初乳の品質と組成の全国的評価。J. Dairy Sci. 95:3997-4005.
Quigley, J.A., A. Lago, C. Chapman, P. Erickson, and J. Polo.2013.牛初乳中の免疫グロブリン G 濃度を推定するための Brix 屈折率計の評価。J. Dairy Sci. 96:1148-1155.

コロストラム・カウンセル - オリゴ糖について

子牛の健康な腸には、IgG 以外の要因も関係していることをご存知ですか?初乳や移行乳に含まれるオリゴ糖は、子牛の腸を健康にする潜在的な仲介役となります。今回のコロストラム・カウンセルでは、子牛の健康全般を最適化するために、これらの因子がどのように作用するのかをご説明します。

 

コロストラム・カウンセルオリゴ糖について

子牛は、子宮内では哺乳動物から子牛への免疫グロブリンの移行がないため、受動免疫 を獲得するためには、良質な初乳を適時に与える必要がある。受動免疫の重要性から、ウシの初乳と移行乳に関する研究のほとんどは IgG の量と質に焦点が当てられてきた。しかし、初乳には腸の適切な発育と成熟に必要な栄養素や生理活性因子も豊富に含まれています。これらの生物活性因子は、初乳の研究分野で人気が出始めたところです。これらの生理活性因子の中にオリゴ糖(OS)があります。これらの分子は基本的に「単糖」であり、新生児の腸の発達に重要な役割を果たすという仮説が立てられている。特に、OSは健康な腸内細菌の確立を助け、病原性細菌を抑制し、初乳から血液中へのIgGの吸収を促進する可能性がある。

初乳中の構造と濃度

前述したように、OSは単純糖化合物であり、乳糖はすべてのOSのコア構造である。構造的に異なる分子を作るために、乳腺ではラクトースのコアにフコース(中性電荷)またはシアル酸(酸性電荷)残基が付加される。ウシの初乳と乳汁中には約40種類のOS化合物が同定されており、ウシOSの大部分(70%以上)はシアル酸残基が結合している(Tao et al.)ウシのOSはヒトのOSとは異なり、ヒトのOSの炭素鎖は長く、シアル酸基が結合しているのはごくわずか(5-15%)である(Ninonuevo et al.)

ウシの初乳に最も多く含まれる OS は 3'sialyllactose (3'SL)で、成熟乳の 4 倍、次いで 6'sialyllactosamine (6'SLN)が 2 番目に濃度が高い (Martin-Sosa et al., 2003; Figure 1)。IgG とは対照的に、OS の濃度は初乳搾乳後もそれほど急速に低下することはない。実際、3'SL、6'SLN、6'シアリルラクトース(6'SL)は分娩 7 日後と比較して、分娩 2 日後の濃度が高いことが示されている(Nakamura et al.)

大半の農場では、出生後初乳を 1~2 食与え、その後すぐに代用乳または全乳に移行することが多い。移行期のミルク(搾乳回数 2~6 回)には、OS の濃度が高く、さらに豊富な生物活性分子が含まれていることから、移行期のミルクを給与することは、酪農場の若い子牛の腸の健康に価値がありそうである。

オリゴ糖の機能

OSの大部分は胃の酸性pHに耐えることができ、子牛の腸内酵素では分解されないため、速やかに腸に到達することができる。しかし、Janschter-Krennら(2013年)は、これらの化合物が実際に構造を変化させ、小腸でも役割を果たす可能性があることを示した。では、これらの小さな単糖は、小腸や大腸でいったい何をしているのだろうか?

健康な腸内細菌のエネルギー源

小腸や大腸に存在するいくつかの有益な細菌群は、OSを分解してエネルギー源として利用するための様々な酵素を持っている。有益な細菌であるビフィズス菌は、ウシの初乳に含まれる主要なOSである3'SLを消費し、その増殖を促進することが明らかになっている(Yu et al.)さらに、最近の研究では、初乳に高濃度の OS が含まれる場合、新生子牛の小腸内のビフィズス菌の量が多くなることが実証されている(Fischer et al.、2018;Malmuthuge et al.、2015)。

子牛の腸内にビフィズス菌が多いと、腸内細菌群全体が健全になる可能性が高い。なぜなら、ビフィズス菌は短鎖脂肪酸を産生し、大腸細胞に良い影響を与えるだけでなく、腸粘膜バリアを安定化させ、腸の免疫システムを向上させて病原性細菌の過剰繁殖を防ぐことができるからである(Picardら、2005;Yasuiら、1995;Boffaら、1992)。さらに、バクテロイデスとして知られる別の有益なグループは、OSのシアル酸部分を独自に利用して、新生児の腸内での増殖と定着を促進することができる(Marcobalら、2011年)。

病原性細菌の抑制

OSは善玉菌の増殖を促進するだけでなく、病原性細菌が腸内に定着するのを防ぐことも示されている。病原体が宿主組織に侵入するためには、腸管細胞の表面にある「宿主糖鎖」として知られるOSと構造的に類似した糖に結合しなければならない。糖鎖と初乳や牛乳のOSの構造は非常に似ているため、OSは「受容体のおとり」として働き、病原体に結合することができる。これにより、病原体が宿主に結合し、その後の感染や病気を引き起こす能力が抑制される(Zivkovic et al.)具体的には、ウシの初乳と移行乳に含まれる主要なOSの2つ、6'SLと6'SLNが、腸内毒素原性大腸菌の結合を阻害することが証明されている(Martin et al.)初乳と移行乳に含まれるその他のOSは、ロタウイルス(Huang et al.、2012年)、コレラ菌(Coppa et al.、2006年)、肺炎球菌(Andersson et al.、1986年)にも結合することができ、健康でバランスのとれた腸内微生物群集を維持する多様な能力を示している。

免疫機能を高める

前述したように、有益な腸内細菌は初乳や牛乳のOSを利用することができるため、複数の経路を通じて免疫系を積極的に制御することができる。例えば、OSを摂取する細菌は、代替エネルギー源を摂取する細菌と比較して、抗炎症性化合物の発現を高め、炎症性化合物を減少させる(Chiclowski et al.)OS上で増殖する細菌はまた、腸細胞間のタイトジャンクションタンパク質の量をアップレギュレートすることができる。これは基本的に、病原性細菌が腸細胞の間を通って血流に入ることができないように、隙間を「締める」ことを意味する(Chiclowski et al.)

OSのシアル酸部分に関する興味深い点の一つは、シアル酸が腸に結合すると、IgGの腸細胞への結合と細胞内への取り込みが促進されることである(Gillら、1999)。このことは、ウシの初乳にシアル酸残基を持つOSが非常に多く、ヒトの初乳にシアル酸を持つOSがごく一部であることを説明することができる。ヒトでは、妊娠中に母体から胎児への免疫グロブリンの受動的移行があるが、ウシでは妊娠中に受動的移行がないため、子牛は初乳からしかIgGを得ることができない。したがって、IgGの受動的移行は、新生子牛の健康と生存を促進する上で最も重要な要因の一つであり、初乳に多く含まれるシアル酸は、子牛の血流にIgGがアクセスするのを助けるために存在するのかもしれない。

マンナンオリゴ糖はどうですか?

マンナンオリゴ糖(MOS)は、生後数週間の子牛の代用乳(Bio-Mos®など)によく添加される。牛由来のOSとは対照的に、マンナンオリゴ糖は酵母、すなわちサッカロマイセス・セレビシエの細胞壁に由来する。マンナンOSは「ブラシのような」構造をしており、サルモネラ菌や大腸菌などの病原性細菌に付着し、腸管細胞壁との結合を阻害して感染を引き起こす。代用乳にMOSを給与した子牛は、糞便中の大腸菌数が減少し(Jacquesら、1994年)、糞便スコアが改善し(Morrisonら、2010年)、成長成績が向上した(Sellarsら、1997年)。

代用乳にMOSを添加した場合に良好な効果が認められたことから、研究者らは初乳や代用初乳にMOSを添加した場合にも同様の効果が見られるかどうかを調べようとした。残念ながら、初乳代替物にMOSを添加した研究では、生後24時間の受動移行や疾病の発生率に影響は見られなかった(Robichaudら、2014年)。

さらに、新鮮なウシの初乳に MOS を添加した最近の研究では、添加し ていない初乳を与えた子牛と比較して、受動的移行に悪影響があることが判明した (Brady et al.)オリゴ糖の構造は生物学的機能の主要な決定要因であり、子牛の腸は進化的に、哺乳動物が初乳に分泌した化合物に反応するように調整されている。牛由来のOSは生まれたばかりの乳牛の子牛にとって「より自然」であるため、生後数日の間にOSを補給することで、MOSを補給した子牛と比較して、受動免疫の増加と腸内環境の改善につながる可能性がある。

テイク・ホーム・メッセージ

初乳や移行期のミルクに含まれるオリゴ糖は、健康な腸内細菌のエネルギー源となり、病原体を抑制し、免疫系を強化することで、腸の健康に良い影響を与える可能性があります。従って、移行期のミルクや良質な初乳代替ミルクを与えることで、新生子牛の腸内保 護を強化できる可能性があります。新生仔牛の腸を最大限に保護するために、従来の代用乳、あるいは全乳に OS を 添加する可能性について、さらなる研究が必要である。

 

数字

 

図1.
ウシの初乳と移行乳に最も多く含まれる2つのオリゴ糖の構造。

図2.
Nakamuraら(2003)の研究では、初乳、移行乳、成熟乳中の主要オリゴ糖(3'SL、6'SL、6'SLN)濃度を測定した。

 

 

アマンダ・フィッシャー、MSc.

SCCL、アルバータ大学リサーチ・アシスタント
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参考文献
Andersson, B., O. Porras, L.A. Hanson, T. Lagergard, and C. Svanborg-Eden.1986.ヒト乳汁およびレセプターオリゴ糖による肺炎球菌およびインフルエンザ菌の付着阻害。J. Infect.Dis.153:232-237.
Boffa, L.C., J.R. Lupton, and M.R. Mariani.1992.ラットにおける食物繊維(小麦ふすま)の変動による大腸上皮細胞増殖、ヒストンアセチル化、および内腔短鎖脂肪酸の調節。Cancer Res. 52:5906-5912.
Brady, M.P., S.M. Godden, and D.M. Haines.2015.新鮮な牛初乳に腸内活性炭水化物を補給すると、ホルスタイン種乳牛子牛の免疫グロブリン G の受動移行が減少する。J. Dairy Sci. 98:6415-6422.
Chiclowski、M.、G.De Lartigue、J.B.German、H.E.Raybould、D.A.Mills。2012.乳児から分離し、ヒトミルクオリゴ糖で培養したビフィズス菌は腸管上皮機能に影響を及ぼす。J. Pediatr.Gastroenterol.55:321-327.
Coppa, G.V., L. Zampini, T. Galeazzi, B. Facinelli, L. Ferrante, R. Capretti, and G. Orazio.2006.ヒトミルクオリゴ糖は下痢病原体のCaco-2細胞への接着を阻害する:大腸菌、コレラ菌、サルモネラ菌。Pediatr.Res.59:377-382。
Ewaschuk, J.B., H. Diaz, L. Meddings, B. Diederichs, A. Dmytrash, J. Backer, M. Looijer-van Langen, and K.L. Madsen.2008.ビフィズス菌から分泌される生理活性因子は、上皮細胞のバリア機能を高める。Am.J. Physiol.Gastrointest.295:G1025-G1034.
Fischer, A.J., N. Malmuthuge, L.L. Guan, and M.A. Steele.2018.Short Communication:牛初乳の加熱処理が初乳中およびホルスタイン新生雄子牛の腸内のオリゴ糖濃度に及ぼす影響。J. Dairy Sci. 101:401-407.
Gill, R.K., S. Mahmood, and J.P. Nagpaul.1999.新生児率腸におけるIgGの微絨毛膜への結合におけるシアル酸の機能的役割。Biol.Neonate.76:55-64.
Huang, P., M. Xia, M. Tan, W. Zhong, C. Wei, L. Wang, A. Morrow, and X. Jiang.2012.ヒトロタウイルスのスパイク蛋白質VP8*は、型特異的に組織血液型抗原を認識する。J. Virol.86:4833-4843.
ジャック、K.A.およびK.E.ニューマン。1994.離乳前後のホルスタイン子牛の成績および健康に及ぼすオリゴ糖サプリメントの効果。J. Anim.Sci. 72(Suppl 1):295.
Jantscher-Krenn, E., C. Marx, and L. Bode.2013.Human milk oligosaccharides are differentially metabolized in neonatal rat.Br. J. Nutr.
Malmuthuge, N., Y. Chen, G. Liang, L.A. Goonewardene, and L.L. Guan.2015.加熱処理した初乳の給与は、新生仔牛の小腸における有益菌のコロニー形成を促進する。J. Dairy Sci. 98:8044-8053.
Marcobal, A., M. Barboza, E.D. Sonnenburg, N. Pudlo, E.C. Martens, P. Desai, C.B. Lebrilla, B.C. Weimer, D.A. Mills, J.B. German, and J.L. Sonnenburg.2011.乳児腸内のバクテロイデス類は、粘液利用経路を介してミルクオリゴ糖を消費する。Cell Host Microbe.10:507-514.
Martin, M.J., A. Martin-Sosa, and P. Hueso.2002.牛乳オリゴ糖のシアリル化画分は、ヒト株における腸管毒素原性大腸菌および尿路病原性大腸菌への結合に部分的に関与している。J. Nutr.
Martin-Sosa, S., M.J. Martin, L.A. Garcia-Pardo, and P. Hueso.2003.ヒトおよびウシの母乳と乳児用ミルク中のシアリルオリゴ糖:泌乳期間の経過に伴う変化。J. Dairy Sci. 86:52-59.
モリソン、S.J.、S.ドーソン、A.F.カーソン。2010.マンナンオリゴ糖と Streptococcus faecium の代用乳への添加が子牛の健康と成績に及ぼす影響。Livest.Sci. 131:292-296.
中村俊輔・木村和彦・渡辺佳明・大谷真司・新井一郎・浦島太郎.(2003).分娩前および泌乳初期のウシの初乳および乳汁中のシアリルオリゴ糖濃度.J. Dairy Sci. 86, 1315-1320.
全国動物健康モニタリングシステム。2011.Dairy Heifer Raiser, 2011.米国農務省-動物・植物衛生検査局-獣医局。米国コロラド州フォートコリンズ。
Ninonuevo、M.R.、Y.Park、H.Yin、J.Zhang、R.E.Ward、B.H.Clowers、J.B.German、S.L.Freeman、K.Killeen、R.Grimm、C.B.Lebrilla。2006.ヒト乳汁中のグリコームのアノテーション戦略。J. Agric.Food Chem.54(20):7471-7480.
Picard, C., J. Fioramonti, A. Francois, T. Robinson, F. Neant, and C. Matuchansky.2005.総説:プロバイオティクスとしてのビフィズス菌-生理学的効果と臨床的有用性。Aliment.Pharmacol.Ther.22:495-512.
Robichaud, M., S.M. Godden, D.M. Haines, D.B. Haley, D.L. Pearl, J. Rushen, and S. LeBlanc.2014.初乳補充液への腸活性炭水化物の添加は、ホルスタイン種乳牛子牛における免疫グロブリン G の受動的移行を改善しない。J. Dairy Sci. 97:5700-5708.
Sellars, K., M. Burril, J. Trei, K.E. Newman, and K.A. Jacques.1997.マンナンオリゴ糖補給がホルスタイン子牛の成績と健康に及ぼす影響。J. Dairy Sci. 80(Suppl. 1):188.
Short, D.M., D.A. Moore, and W.M. Sischo.2016.乳牛新生仔牛における受動免疫の移行に対するオリゴ糖の効果を評価する無作為化臨床試験。J. Vet.Intern.Med.30:1381-1389.
Tao, N., E.J. DePeters, S. Freeman, J.B. German, R. Grimm, and C.B. Lebrilla.2008.Bovine milk glycome.J. Dairy Sci. 91:3768-3778.
安井浩司・清島順子・牛島弘志.1995.Bifidobacteria breve YIT4064を摂取させたマウスの仔マウスにおけるロタウイルス誘発下痢症に対する受動的防御効果。J. Infect.Dis.172(2):403-409.
Yu, Z-T., C. Chen, and D.S. Newburg.2013.単離されたヒト腸内微生物による主要なフコシル化およびシアリル化ヒトミルクオリゴ糖の利用。Glycobiology.23(11):1281-1292.
Zivkovic, A.M., J.B. German, C.B. Lebrilla, and D.A. Mills.2011.ヒトミルクグリコバイオームと乳児の消化管微生物叢への影響。PNAS.108(1):4653-4658.